|
品牌：Enzo
CAS No.： 储存条件：+4℃ 纯度：– |
| 产品编号
(生产商编号) |
等级 | 规格 | 运输包装 | 零售价(RMB) | 库存情况 | 参考值 |
|
ADI-950-112-0100 |
– | 100 tests | – | 3,850.00 | – | – |
* 干冰运输、大包装及大批量的产品需酌情添加运输费用
* 零售价、促销产品折扣、运输费用、库存情况、产品及包装规格可能因各种原因有所变动，恕不另行通知，确切详情请联系上海金畔生物科技有限公司。
产品描述相关资料下载相关产品浏览记录
高灵敏度低背景PolyView™纳米高分子检测试剂(小鼠-辣根过氧化物酶) 直接标记小鼠辣根过氧化物酶,检测福尔马林固定石蜡包埋组织和冷冻组织也可用于血涂片和细胞的准备.特点:无生物素纳米检测
避免内源性生物素背景；高强度的显色反应能快速染色；可与HighDef™系列各种显色试剂联用（需单独购买）应用: IHC
|
品牌：Enzo
CAS No.： 储存条件：+4℃ 纯度：– |
| 产品编号
(生产商编号) |
等级 | 规格 | 运输包装 | 零售价(RMB) | 库存情况 | 参考值 |
|
ADI-950-113-0100 |
– | 100 tests | – | 4,170.00 | – | – |
* 干冰运输、大包装及大批量的产品需酌情添加运输费用
* 零售价、促销产品折扣、运输费用、库存情况、产品及包装规格可能因各种原因有所变动，恕不另行通知，确切详情请联系上海金畔生物科技有限公司。
产品描述相关资料下载相关产品浏览记录
高灵敏度低背景PolyView™纳米高分子检测试剂(小鼠/兔-辣根过氧化物酶) 直接标记小鼠辣根过氧化物酶,检测福尔马林固定石蜡包埋组织和冷冻组织也可用于血涂片和细胞的准备.特点:无生物素纳米检
测避免内源性生物素背景；高强度的显色反应能快速染色；可与HighDef™系列各种显色试剂联用（需单独购买）应用: IHC
非肽型食欲素-２受体激动剂
【NEW】YNT-185 · 2HCl
YNT-185 · 2HCl 是非肽型食欲素-２受体（OX2R）的激动剂。食欲素是负责神经传导的肽之一，由存在于下丘脑的食欲素神经元分泌产生。食欲素受体有１型和２型受体，尤其是２型受体在控制人体睡眠-觉醒起着重要作用。大脑食欲素的缺乏，是导致人体白天困倦不堪，引发嗜睡症等睡眠障碍症的原因。有报道称，给嗜睡症小鼠注入食欲素，可以改善病症。但由于食欲素是肽，无法穿过血脑屏障，只能通过脑内注药，否则无法达到预期治效。
实验表明，不管是给小鼠进行脑内注药还是腹腔注药，都可以延长小鼠的觉醒时间，改善小鼠的嗜睡症。
◆ 产品简介
|
● 外观：白色~淡褐色；结晶性粉末~粉末 ● 含量（HPLC）: 98.0％以上 ● 溶解性：生理盐水（pH 2.4）…1.3 mol/L 1） ● EC50：OX2R…0.028 µmol/L（free base自由基） 1） OX1R…2.750 µmol/L（free base） 1） |
|
［参考文献］
1） Nagahara, T., Saitoh, T., Kutsumura, N., Irukayama-Tomobe, Y., Ogawa, Y., Kuroda, D., Gouda, H.,
1） Kumagai, H., Fujii, H., Yanagisawa, M. and Nagase, H. : J. Med. Chem., 58, 7931(2015).
相关产品
Orexin
|
产品编号 |
产品名称 |
规格 |
容量 |
|
159-03161 |
Orexin A（Human） |
细胞生物学用 |
0.1 mg |
|
156-03171 |
Orexin B（Human） |
细胞生物学用 |
0.1 mg |
|
153-03181 |
Orexin B（Rat, Mouse） |
细胞生物学用 |
0.1 mg |
Orexin 受体激动剂
|
产品编号 |
产品名称 |
规格 |
容量 |
|
013-24771 |
[Ala11, D-Leu15]-Orexin B |
细胞生物学用 |
1 mg |
|
194-17221 |
SB-668875 |
细胞生物学用 |
1 mg |
Orexin 受体拮抗剂
|
产品编号 |
产品名称 |
规格 |
容量 |
|
104-00171 |
JNJ10397049 |
细胞生物学用 |
10 mg |
|
100-00173 |
50 mg |
||
|
108-00174 |
250 mg |
||
|
196-17421 |
SB-408124 |
细胞生物学用 |
5 mg |
|
192-17423 |
25 mg |
||
|
192-17761 |
SB-674042 |
细胞生物学用 |
5 mg |
|
198-17763 |
25 mg |
| 产品编号 | 产品名称 | 产品规格 | 产品等级 |
| 254-00641 | YNT-185 Dihydrochloride Hydrate | 5 mg | 细胞生物学用 |
| 250-00643 | YNT-185 Dihydrochloride Hydrate | 100 mg | 细胞生物学用 |
人iPS 细胞·小鼠 ES 细胞冻存用
StemSure® 细胞冻存液 Update！！
本产品是可用于冻存以小鼠 ES 细胞为代表的各种通用细胞株的无血清型细胞冻存液。含 BSA 和 10% DMSO 。标准测试中用小鼠 ES 细胞 D3 株冻存、复苏，确认其细胞存活率。本产品采用缓慢冻存法冻存细胞，无需使用程序降温盒。
使用本产品对小鼠 ES 细胞 D3 株在 -80℃ 进行保存，可冻存２年；普通细胞在 -150℃ 下可冻存 30 个月，并且可维持很高的存活率。
另外，本产品已确认可用于冻存人 iPS 细胞。
◆特点
● 可在维持人 iPS 细胞、小鼠 ES 细胞未分化能力的状态下，直接进行冻存。
● 可在 -80℃ 下进行长时间冻存。
● 冻存的通用动物细胞株的细胞存活率好。
● 无血清型
● 无需自行配制试剂
● 无需使用程序降温盒
◆测试项目
● 细胞存活率时间（使用小鼠 ES 细胞 D3 株进行实验）
● 无菌实验
● 内毒素实验
● 支原体实验
◆使用方法
人 iPS 细胞的冻存
1. 冻存
① 去除人 iP S细胞培养皿中的营养液，用 PBS 清洗后，用 Accutase 等剥离细胞。
② 添加含有 10 μmol/L Y-27632的人 iPS 培养基（hPSC 培养基（+ROCKi）），用移液器吹打成单细胞。
③ 将吹打分散的细胞悬浮液移至样本管，离心（1,000 rpm，3 min，室温）后去除上清液。
④ 添加含 hPSC 培养基（+ROCKi）的培养基，用移液器悬浮。
⑤ 计算细胞数量。
⑥ 以１×106 cells/管分注在细胞悬浮液保存管中。
⑦ 离心（1,000 rpm，3 min，室温）后去除上清液。
⑧ 使用 50 μL/管本产品进行悬浮，在 -80℃ 下进行冻存。
2. 复苏
① 在冻存管中添加 hPSC 培养基（+ROCKi），复苏冻结细胞（不使用温水浴法）。
② 离心（1,000 rpm，3 min，室温）后去除上清，再次添加 hPSC 培养基（+ROCKi），悬浮。
③ 计算细胞数量。
④ 在培养皿中按照２×105 cells/6 cm 进行细胞培养。
小鼠ES细胞、通用动物细胞株的冻存
1. 冻存
① 收集细胞至样本管中。
② 离心，去除上清。
③ 在样本管中加入本产品，悬浮。
④ 分注至悬浮液保存管中。
⑤ 将保存管在-80℃冻洁一晚。
⑥ 保存于-150℃或-80℃
2. 复苏
① 将冻存管置于37℃的水浴槽中解冻。
② 在培养用的培养基中进行悬浮。
③ 离心去除上清后用培养基进行重悬。
④ 在培养容器内培养细胞。
◆人iPS 细胞 201B7 细胞系的冻存 Update！！
将人 iPS 细胞 201B7 株分散为单细胞后，在 StemSure® 冻存液中悬浮，并在-80℃下冻存４天。反复冻结、复苏３次之后，确认细胞存活率和各种未分化标记（Oct3/4、Sox2、SSEA-4、Tra-1-81）的表达。
细胞生存率
未分化标记表达的确认
◆小鼠 ES 细胞 D3 细胞系的冻存
-150℃保存（30个月）
-80℃保存（24个月）
<冻存>
① 在 1 mL本产品中悬浮１~2×106 cells，分注至冻存管中。
② 在 -80℃冻存１天后转移至-150℃冻存。或者在-80℃冻存。
<复苏>
③ 在37℃的温浴槽中复苏。
④ 在细胞培养基中悬浮、离心。
⑤ 弃上清，用细胞培养基重悬细胞并进行培养。
○确认细胞集落形成
培养细胞数：500个细胞/孔（含胶原蛋白涂层的６孔板）
培养时间：10天
◆冻存通用动物细胞系后的细胞存活率
用 StemSure® 细胞冻存液冻存各种动物细胞株。可确认到冻存30个月后仍维持高存活率，且复苏后细胞可移植。
|
细胞种类 |
存活率（%） |
细胞移植 |
||
|
2个月 |
4个月 |
30个月 |
||
|
人 |
||||
|
HeLa |
97 |
93 |
97 |
○ |
|
293T |
96 |
95 |
95 |
○ |
|
K562 |
91 |
84 |
84 |
○ |
|
灵长类 |
||||
|
COS-7 |
97 |
93 |
92 |
○ |
|
Vero |
95 |
94 |
91 |
○ |
|
狗 |
||||
|
MDCK |
98 |
99 |
100 |
○ |
|
小鼠 |
||||
|
NIH/3T3 |
93 |
93 |
89 |
○ |
|
P19 |
93 |
76 |
77 |
○ |
|
STO |
90 |
91 |
91 |
○ |
|
L929 |
94 |
90 |
91 |
○ |
|
仓鼠 |
||||
|
CHO |
97 |
96 |
98 |
○ |
<冻存>
① 在 1 mL本品中悬浮 1~2×106 cells，分注至冻存管中。
② 在-80℃冻存1天后转移至-150℃分别冻存２个月、４个月、30个月。
<复苏>
③ 在37℃的水浴槽中复苏。
④ 细胞培养用培养基中悬浮、离心。
★其他冻存液★
|
产品编号 |
产品名称 |
规格 |
容量 |
|
031-24051 |
CultureSure® DMSO |
细胞培养用 |
10 mL×10 |
|
039-23511 |
CultureSure® Freezing Medium |
细胞培养用 |
10 mL |
◆相关产品
★StemSure® 系列★
本系列产品适用于培养 ES 细胞和 iPS 细胞。每个批次产品都适用小鼠 ES 细胞 D3 细胞系进行品质实验检测。
|
产品编号 |
产品名称 |
规格 |
容量 |
|
197-16275 |
StemSure® D-MEM (High Glucose) with Phenol Red and Sodium Pyruvate |
细胞培养用 |
500 mL |
|
191-18375 |
Stemsure® Serum Replacement |
细胞培养用 |
500 mL |
|
198-15781 |
StemSure® 10 mmol/L 2-Mercaptoethanol Solution ( × 100) |
细胞培养用 |
100 mL |
|
195-15791 |
StemSure® 50 mmol/L Monothioglycerol Solution ( × 100) |
细胞培养用 |
100 mL |
|
190-15805 |
StemSure® 0.1w/v% Gelatin Solution |
细胞培养用 |
500 mL |
|
199-16051 |
StemSure® LIF, Mouse, recombinant, Solution |
细胞培养用 |
106 units |
|
195-16053 |
StemSure® LIF, Mouse,recombinant, Solution |
细胞培养用 |
106 units×10 |
★rBC2LCN-FITC★
rBC2LCN 可特异性识别未分化的人ES/iPS细胞。将本产品添加至含有人ES/iPS细胞的培养液中，可对活性状态下的未分化细胞进行染色。<详情>
★液体培养基·细胞培养用试剂★
FUJIFILM Wako 充分准备了以液体培养基为代表的平衡盐溶液、细胞分离·分散用溶液、抗生物素溶液、细胞外基质等产品。<详情>
★ES·iPS细胞研究用试剂★
2007年 iPS 细胞树突发表后，许多与iPS细胞有关的文献被发表出来。FUJIFILM Wako 推出了在各个文献中都有所报道的与维持ES细胞·iPS细胞的未分化能和分化诱导相关的低分子化合物。<PDF下载>
★LIF，人，重组体，培养上清★
LIF 具有抑制小鼠 ES 细胞分化的作用，因此可在培养细胞时，用来维持 ES 细胞的未分化状态。<详情>
无动物源成分的干细胞冻存液，请点击：StemSure® hPSC冻存液, AF
| 产品编号 | 产品名称 | 产品规格 | 产品等级 |
| 195-16031 | StemSure Freezing Medium StemSure细胞冻存液 |
100 mL | – |
分化诱导·分化标记
Stemsure® LIF，小鼠，重组
Stemsure® 系列使用小鼠 ES 细胞 D3 株进行实验测试（细胞增殖试验和菌落形成试验）和碱性磷酸酶（ALP）染色，是对细胞增殖和未分化能力有质量保证的产品系列。本产品是纯化自大肠杆菌中表达的小鼠 LIF。可用于小鼠 ES 细胞的培养。
◆产品概述
● 表达：大肠杆菌（在Ｃ端含有 6×His 标签）
● 活性：106 units/mL
● 单位的定义：在使用小鼠 ES 细胞株（D3 株）的细胞增殖促进试验中，当达到最大增殖度的 50% 时，在此增殖度下产品使用量的 1/20 相当于
● 1 unit
● 使用浓度：培养小鼠 ES 细胞株（D3株），建议使用终浓度为 1,000 units/mL
● 形状：D-PBS，1%BSA
● 0.2 µm 过滤灭菌
● 保存条件：-20℃ 保存。融解后请在 2-10℃ 保存，并尽快使用。
◆试验项目
● 实用试验（小鼠 ES 细胞）
● 支原体检测
● 无菌试验
● ALP 染色（小鼠 ES 细胞）
● 内毒素测试等等
◆细胞形态/未分化标记物在小鼠 ES 细胞 D3 株中的确认
● 集落形态和 ALP 染色 ●
使用本产品培养小鼠 ES 细胞 D3 株，可以观察到小鼠 ES 细胞特有光泽的细胞集落。同时确认了 ALP 染色呈阳性。
|
|
|
|
细胞形态确认 |
ALP 染色 |
● 未分化标记物表达的确认 ●
使用本产品将小鼠 ES 细胞 D3 株继代培养８代，确认了各种未分化标记物呈阳性。
培养基组成
StemSure® D-MEM + 15％ SSR + 2 mmol/L L-Glutamine + 1×MEM Non-essential Amino Acids + 0.1 mmol/L StemSure® 2ME + 1×Penicillin-Streptomycin + 1,000 units/mL StemSure® LIF
◆产品信息
|
产品编号 |
产品名称 |
规格 |
|
199-16051 |
StemSure® LIF, Mouse, recombinant, Solution StemSure® 白细胞抑制因子，小鼠，重组，溶液 |
106 units |
|
195-16053 |
106 units×10 |
◆相关产品
|
产品编号 |
产品名称 |
规格 |
|
197-16275 |
StemSure® D-MEM(High Glucose) with Phenol Red and Sodium Pyruvate StemSure® D-MEM（高糖）含酚红和丙酮酸钠 |
500 mL |
|
198-15781 |
StemSure® 10mmol/l 2-Mercaptoethanol Solution (×100) StemSure® 10mmol/L 2-巯基乙醇溶液（×100） |
100 mL |
|
195-15791 |
StemSure® 50mmol/l Monothioglycerol Solution(×100) StemSure® 50mmol/L 硫代甘油溶液（×100） |
100 mL |
|
191-18375 |
StemSure® Serum Replacement (SSR) Stemsure® 血清替代品（SSR） |
500 mL |
|
073-05391 |
200mmol/l L-Glutamine Solution (×100) 200mmol/l L-谷氨酰胺溶液（×100） |
100 mL |
|
168-23191 |
Penicillin-Streptomycin Solution (×100) 青霉素 – 链霉素溶液（×100） |
100 mL |
| 产品编号 | 产品名称 | 产品规格 | 产品等级 |
抗Ago单抗系列
FUJIFILM Wako有识别人和小鼠各种Ago亚科蛋白的小鼠源单抗，供免疫沉淀与免疫印迹检测（Western Blotting）实验用。免疫沉淀用抗体能与人和小鼠样本中各种Ago亚科蛋白产生特异性免疫共沉淀，从而提取结合了各种Ago蛋白的microRNA。另外，可以通过免疫印迹用抗体检测出免疫沉淀所提取的蛋白。
| 产品编号 | 抗原 | 交叉性 | 产品名称 | 克隆号 | 亚型 | 用途 | 浓度 |
| 015-22411 | Ago1 | 人、小鼠 |
抗Ago1，单抗(2A7) |
2A7 | IgG2a･k | IP，ICC，RIP | 1.0 mg/mL |
| 018-22401 |
抗Ago1，单抗（1F2） |
1F2 | IgG2a･k | WB | |||
| 011-22033 | Ago2 | 人 |
抗人Ago2，单抗 |
4G8 | IgG1 | IP，WB | |
| 015-22031 | ICC，RIP | ||||||
| 014-22023 | 小鼠 |
抗小鼠Ago2，单抗 |
2D4 | IgG1 | IP，WB | ||
| 018-22021 | ICC，RIP | ||||||
| 018-23241 | Ago3 | 人 |
抗人Ago3，单抗（1C12） |
1C12 | IgG1 | IP，RIP | |
| 010-23821 |
抗Ago3，单抗（6-107） |
6-107 | IgG1･k | WB | |||
| 012-25503 | 小鼠 |
抗小鼠Ago3，单抗（S09） |
S09 | IgG1･k | IP，RIP | ||
| 013-25491 |
抗小鼠Ago3，单抗（S011） |
S011 | IgG1･k | WB | |||
| 019-25493 | |||||||
| 019-24751 | Ago4 | 人、小鼠 |
抗Ago4，单抗（2G7） |
2G7 | IgG2b | IP，RIP | |
| 012-24741 |
抗Ago4，单抗（2B2） |
2B2 | IgG1 | WB | |||
| 012-25581 |
Ago 1– 4 |
人、小鼠 |
抗Ago1–4，单抗（1G3） |
1G3 | IgG1 | IP，WB | |
| 018-25583 | |||||||
| 016-25584 |
◆重组Ago蛋白的免疫沉淀
用人和小鼠的重组Ago蛋白（C端与DYKDDDDK标签融合）评估抗体的免疫沉淀能力。抗Ago1、Ago2、Ago3、Ago4抗体分别能特异性免疫沉淀对应的重组Ago蛋白，而抗Ago1-4抗体能免疫沉淀所有Ago亚科蛋白。
【检测】一抗：抗DYKDDDDK抗体（1E6) 二抗：抗小鼠IgG、过氧化物酶结合
◆重组Ago蛋白的免疫印迹检测
用人和小鼠的重组Ago蛋白（C端与DYKDDDDK标签融合）评估抗体的免疫印迹检测能力。结果显示，抗Ago1、Ago2、Ago3、Ago4抗体分别能特异性检测出对应的重组Ago蛋白，而抗Ago1-4抗体能检测所有Ago亚科蛋白。
【检测】一抗：各种抗Ago单抗 二抗：抗小鼠IgG、过氧化物酶结合
◆内源性Ago蛋白的免疫沉淀与免疫印迹检测
以抗人Ago抗体对人K562细胞中的内源性Ago蛋白进行免疫沉淀，或者以抗小鼠Ago抗体对小鼠P388D1细胞、小鼠肺组织中的内源性Ago蛋白进行免疫沉淀，并运用免疫印迹进行检测。结果发现，抗Ago1、Ago2、Ago3、Ago4抗体分别能在特异性免疫沉淀和免疫印迹实验中识别对应的内源性Ago蛋白，而抗Ago1-4抗体则与内源性Ago1、Ago2、Ago3均能发生免疫沉淀。
【检测】一抗：各种抗Ago单抗 二抗：抗小鼠IgG、过氧化物酶结合
※ 本页面产品仅供研究用，研究以外不可使用。
相关资料
siRNA与Ago2.pdf
| 产品编号 | 产品名称 | 产品规格 | 产品等级 |
| 015-22411 | Anti Ago1, Monoclonal Antibody(2A7) Ago1单抗（2A7） |
50 μL | for Immunochemistry |
| 018-22401 | Anti Ago1, Monoclonal Antibody(1F2) Ago1单抗（1F2） |
50 μL | for Immunochemistry |
| 011-22033 | Anti Human Ago2, Monoclonal Antibody 抗人Ago2单抗 |
50 μL | for Immunochemistry |
| 015-22031 | Anti Human Ago2, Monoclonal Antibody 抗人Ago2单抗 |
100 μL | for Immunochemistry |
| 014-22023 | Anti Mouse Ago2, Monoclonal Antibody 抗小鼠Ago2单抗 |
50 μL | for Immunochemistry |
| 018-22021 | Anti Mouse Ago2, Monoclonal Antibody 抗小鼠Ago2单抗 |
100 μL | for Immunochemistry |
| 018-23241 | Anti Mouse Ago3, Monoclonal Antibody (Clone #1C12) 抗小鼠Ago2单抗（克隆号 #1C12） |
50 μL | for Immunochemistry |
| 010-23821 | Anti Ago3, Monoclonal Antibody(6-107) | 50 μL | for Immunochemistry |
| 012-25503 | Anti Mouse Ago3, Monoclonal Antibody(mA3-S9) | 2 mL | for Immunochemistry |
| 013-25491 | Anti Mouse Ago3, Monoclonal Antibody(mA3-S11) | 50 μL | for Immunochemistry |
| 019-25493 | Anti Mouse Ago3, Monoclonal Antibody(mA3-S11) | 2 mL | for Immunochemistry |
| 019-24751 | Anti Ago4, Monoclonal Antibody(2G7) | 50 μL | for Immunochemistry |
| 012-24741 | Anti Ago4, Monoclonal Antibody(2B2) | 50 μL | for Immunochemistry |
| 012-25581 | Anti Ago1-4, Monoclonal Antibody | 200 μL | for Immunochemistry |
| 018-25583 | Anti Ago1-4, Monoclonal Antibody | 1 mL | for Immunochemistry |
| 016-25584 | Anti Ago1-4, Monoclonal Antibody | 5 mL | for Immunochemistry |
anti-CD40 (mouse), mAb (FGK45)
抗小鼠CD40单抗（FGK45）
◆规格/处理
|
产品详情 |
|
|
别名 |
肿瘤坏死因子受体超家族成员5；CD40L受体 |
|
产品类型 |
单克隆抗体 |
|
属性 |
|
|
克隆 |
FGK45 |
|
同型 |
大鼠IgG2a |
|
来源/宿主 |
纯化自浓缩杂交瘤组织培养上清液 |
|
免疫原/抗体 |
重组小鼠CD40嵌合蛋白 |
|
应用 |
流式细胞术 功能应用：在体内和体外激活B细胞和NK细胞。进行细胞或体内实验时， 功能应用：建议使用不含防腐剂的抗体（产品编号：AG-20B-0036PF）。 |
|
交叉反应 |
小鼠 |
|
特异性 |
识别小鼠CD40 |
|
纯度 |
≥95% (SDS-PAGE) |
|
纯化详情 |
蛋白G亲和纯化 |
|
内毒素水平 |
<0.01 EU/μg纯化蛋白(LAL test; Lonza) |
|
浓度 |
1 mg/mL |
|
配方 |
含0.02%叠氮钠的PBS缓冲液 |
|
其他产品数据 |
广泛用于CD40的刺激性mAb。间接性激活NK细胞，产生显著的抗癌抗转移作用。 |
|
运输与处理 |
|
|
运输 |
蓄冷剂 |
|
短期储存 |
+4 °C |
|
长期储存 |
-20 °C |
|
处理建议 |
开启后，分成等分并储存在-20 °C |
|
使用/稳定性 |
在-20 °C储存条件下，稳定保存至少1年 |
◆概述
CD40属于肿瘤坏死因子受体超家族，并且在介导多种免疫和炎症反应，如T细胞依赖性抗原种类转换、记忆B细胞发育与淋巴母细胞中心形成中是必不可少的。CD40-CD40L的相互作用对于淀粉样蛋白诱导的小胶质细胞激活是必需的。因此，这也被认为是阿尔茨海默病发病机制的早期事件。CD40由抗原呈递细胞组成性表达，包括树突细胞、B细胞和巨噬细胞。与其在正常细胞上的广泛表达一致，CD40在多种肿瘤细胞上均有表达，包括非霍奇金淋巴瘤和霍奇金淋巴瘤、骨髓瘤和鼻咽癌、膀胱癌、子宫颈癌、肾癌和卵巢癌等。
◆产品列表
|
产品编号 |
产品名称 |
包装 |
|
AG-20B-0036-C100 |
anti-CD40 (mouse), mAb (FGK45) |
100 µg |
|
AG-20B-0036-C500 |
anti-CD40 (mouse), mAb (FGK45) |
500 µg |
◆相关产品
|
产品编号 |
产品名称 |
包装 |
|
ALX-522-110-C010 |
MEGACD40L (soluble) (human), (recombinant) |
10 μg |
|
ALX-522-120-C010 |
MEGACD40L (soluble) (mouse), (recombinant) |
10 μg |
|
ANC-504-020 |
CD40 (human)-muIg Fusion Protein |
25 µg |
|
AG-40B-0020-3010 |
CD40L (mouse) (multimeric) (rec.) |
3×10 µg |
|
AG-40B-0020-C010 |
CD40L (mouse) (multimeric) (rec.) |
10 µg |
|
AG-40B-0010-3010 |
CD40L (human) (multimeric) (rec.) |
3×10 µg |
|
AG-40B-0010-C010 |
CD40L (human) (multimeric) (rec.) |
10 µg |
|
AG-40B-0010B-C010 |
CD40L (human) (multimeric) (rec.) (Biotin) |
10 µg |
|
AG-40B-0010B-3010 |
CD40L (human) (multimeric) (rec.) (Biotin) |
3 ×10 µg |
|
AG-27B-6002PF-C100 |
anti-CD40L (human), mAb (rec.) (blocking) (hu5c8) (preservative free) 抗CD40L（人）单克隆抗体（重组）（封闭） （hu5c8）（不含防腐剂） |
100 µg |
|
AG-20B-0036PF-M005 |
anti-CD40 (mouse), mAb (FGK45) (preservative free) |
5 mg |
|
AG-20B-0036PF-C100 |
anti-CD40 (mouse), mAb (FGK45) (preservative free) |
100 µg |
|
AG-20B-0036PF-C500 |
anti-CD40 (mouse), mAb (FGK45) (preservative free) |
500 µg |
※ 本页面产品仅供研究用，研究以外不可使用。
参考文献
|
1. |
The SCID but not the RAG-2 gene product is required for S mu-S epsilon heavy chain class switching: A. Rolink, et al.; Immunity 5, 319 (1996) |
|
2. |
Characterization of immature B cells by a novel monoclonal antibody, by turnover and by mitogen reactivity: A.G. Rolink, et al.; Eur. J. Immunol. 28, 3738 (1998) |
|
3. |
Anti-CD40 antibody induces antitumor and antimetastatic effects: the role of NK cells: J.G. Turner, et al.; J. Immunol. 166, 89 (2001) |
|
4. |
Therapeutic activity of agonistic monoclonal antibodies against CD40 in a chronic autoimmune inflammatory process: C. Mauri, et al.; Nat. Med. 6, 673 (2000) |
|
5. |
Ovarian insufficiency and early pregnancy loss induced by activation of the innate immune system: A. Erlebacher, et al.; J. Clin. Invest. 114, 39 (2004) |
|
6. |
CD154 is a negative regulator of autoaggressive CD8+ T cells in type 1 diabetes: C.M. McGregor, et al.; PNAS 101, 9345 (2004) |
|
7. |
IRF-7 is the master regulator of type-I interferon-dependent immune responses: K. Honda, et al.; Nature 434, 772 (2005) |
|
8. |
In vivo and in vitro regulation of type I IFN synthesis by synergistic effects of CD40 and type II IFN: J.A. Greene, et al.; J. Immunol. 176, 5995 (2006) |
|
9. |
IL-10- and IL-12-independent down-regulation of allergic sensitization by stimulation of CD40 signaling: P.W. Hellings, et al.; J. Immunol. 177, 5138 (2006) |
|
10. |
Agonistic Anti-CD40 Antibody Profoundly Suppresses the Immune Response to Infection with Lymphocytic Choriomeningitis Virus: C. Bartholdy, et al.; J. Immunol. 178, 1662 (2007) |
|
11. |
Excessive interferon-α signaling in autoimmunity alters glycosphingolipid processing in B cells: A. Hee-Meng Tan, et al.; J. Autoimmun. in press (2017) |
| 产品编号 | 产品名称 | 产品规格 | 产品等级 |
LBIS® 抗dsDNA-小鼠ELISA试剂盒
LBIS® Mouse Anti-dsDNA ELISA Kit
近年来研究人员多通过使用与人具有同样的自身免疫性疾病的实验动物自然发病和人为使实验动物发症的方式来研究自身免疫性疾病的机制阐明和新型药物开发。自然发病系统代表的MRL/lpr小鼠被应用到很多实验。MRL/lpr小鼠在淋巴结肿瘤发病同时伴随着肾炎、血管炎、关节炎的高机率发病，对包含慢性风湿性关节炎（RA）模型的自身免疫性疾病发病机制的阐明，可作为有效的模型进行研究。MRL/lpr小鼠血清中被检测出自身抗体有IgG型类风湿因子（RF）、IgM型类风湿因子（RF）、抗ssDNA 抗体、抗dsDNA 抗体、抗Sm 抗体。
通过使用该疾病动物血清中自身抗体含量做标准曲线，通过单位转换，可进行测量之间数值的比较。
LBIS® 抗dsDNA-小鼠ELISA试剂盒采用了测定小鼠抗dsDNA 抗体浓度的夹心酶联免疫测定法。
此试剂盒仅限研究使用。
◆特点
● 全反应时间是4小时20分钟。
● 测定小鼠血清或者血浆（肝素血浆除外）中的抗dsDNA 抗体浓度。
● 可测定微量样本（标准操作法是5 μL）。
● 1个试剂盒可做96孔。
● 标准品是小鼠源。
● 全部试剂均为液体。
试剂盒的保存和使用期限
试剂盒在2-8℃保存。此保存条件下，有效期（记载在外箱标签）内试剂盒是稳定的。开封的试剂对应保存状态可能会受到影响，请尽早使用。
◆测定原理
本试剂盒是标准品、稀释样本在抗原包被的微孔板中进行孵育处理。孵育2小时后清洗，加入过氧化物酶结合抗小鼠IgG抗体，与捕捉的抗体孵育2小时。清洗后，显色剂（TMB）与孔中残留的过氧化物酶反应。添加酸性溶液可终止反应。反应生成的黄色产物在450 nm处（副波长620 nm）测定。吸光度与抗小鼠dsDNA 抗体浓度成正比。标准品浓度对应吸光度可制作成标准曲线。通过标准曲线获得未知样本浓度。
◆试剂盒组成
|
组成 |
状态 |
包装 |
|
（A）抗原包被96孔板 |
直接使用 |
96 wells（（8×12）/个） |
|
（B）标准抗小鼠dsDNA 抗体溶液（10000 mU/mL）※ |
浓缩液 |
100 μL/瓶 |
|
（C）缓冲液 |
直接使用 |
60 mL/瓶 |
|
（D）标记抗体 （过氧化物酶结合抗小鼠IgG抗体） |
浓缩液 |
20 μL/瓶 |
|
（E）显色液（TMB） |
直接使用 |
12 mL/瓶 |
|
（F）终止液（1M H2SO4）※注意操作 |
直接使用 |
12 mL/瓶 |
|
（G）浓缩清洗液（10×） |
浓缩液 |
100 mL/瓶 |
|
盖板 |
1 个 |
|
|
操作说明书 |
1 本 |
※根据批次不同，数值有差异。
◆所需必要设备
● 蒸馏水。
● 标准溶液稀释用试管。
● 清洗液（稀释用溶液）用玻璃器具。（量筒·瓶）
● 枪头交换式移液器。（一次性枪头5 μL正规的移液枪，以及50-450 μL正规的移液枪）
● 连续分装移液枪。（例：Eppendorf 的multipette plus、可进行100 μL连续分装的仪器。）
● 纸巾等吸水性物品。（清洗后去除板上残留液体）
● 搅拌器。（Vortex类型）
● 96孔板用振荡器。（约800 rpm）
● 96孔板用清洗机（若有是最好）或者注射瓶。
● 96孔板酶标仪。（450 ±10 nm 、620 nm：600～650 nm）
● 数据分析用软件。（若有是最好）
◆试剂盒性能
● 测定范围
● 小鼠抗dsDNA 抗体检测范围在15.6-1000 mU/mL内。
● 特异性
● 本ELISA系统使用的标识抗体对抗小鼠IgG抗体具有特异性。
● 与小鼠IgM的反应交差性在检测灵敏度以下。
● 精密度实验
● ①批次变动（N=30）平均C.V.值是4.2%
● ②日差可重复性实验（N=30、3天）平均C.V.值是4.7%
欲了解更多相关产品信息，请点击文字：LBIS® 疾病相关动物模型ELISA试剂盒系列
相关资料
LabAssay·shibayagi·NK细胞
◆注意事项
● 本试剂盒需要由掌握ELISA 法技术的人员，或者是在技术人员指导下使用。
● 手动操作测定时请使用对可重复性较稳定的移液器。
● 准备工作以及本试剂盒操作中，请穿戴手套，眼镜，保护服。
● 试剂类请不要接触皮肤。误将本试剂盒的试剂接触眼睛、口腔、伤口、皮肤等情况请立即进行应急处理，如用 ● 自来水彻底冲洗，必要时请就医。
● 使用本试剂盒的空间请不要进食和吸烟。
● 本试剂盒含有动物源成分。与测定样本一样可能会有感染的危险性，操作需要注意。
● 请不要使用加热灭活样本。
● 抗凝剂请使用除肝素以外试剂。
● 试剂类请勿入口。
● 批次号不同的产品请不要混合使用。
● 各步骤静置反应时，为防止板孔干燥、异物混入、分装试剂蒸发。请必须盖上盖板。
● ELISA法会受到测定环境影响的。测定操作、静置反应的室温严格控制在：20~25℃（实验台上或者是恒温箱 ● 内温度）。另外，避免在风速（也包括空调风）0.4 m/sec*以上，湿度不足30%的环境下测定。
*若想获取相关标准的内容请联系我们。
◆技术提示
● 请注意样本和试剂中不要混入不纯物。建议使用1孔/1枪头。
● 显色剂在96孔板使用前是无色或者透明的。请避光保存。
● 终止液在96孔板使用前是无色的。将终止液加入到孔中，颜色立即从蓝色变成黄色。
● 不得已在风速：0.4 m/sec以上，湿度不满30%的操作环境下测定时，各步骤的静置反应均需要盖上盖板，请 ● 采取增加各孔的密闭度措施。
例：用封口膜覆盖板孔，在其上面覆盖盖板，或者在恒温箱内，泡沫塑料箱内静置反应等。要根据测定环境的条件制定出不同的对策方法。具体详细ELISA技术信息请联系我们。
● 使用完的样本，使用的消耗品等请用1%福尔马林、2%戊二醛或者0.1%以上的次氯酸钠溶液浸泡1小时。或者 ● 高压灭菌处理后废弃。另外，使用的消耗品和未使用的药品请按照规定以及法律和它所属的设施各区域的规章丢● 弃。
◆试剂配制
● 试剂盒的试剂使用前必须恢复到室温（20-25℃）
● 请按照测定所需用量制备试剂。
● 请不要使用超过有效期（外箱记载）的试剂。
室温直接使用的试剂
[抗原包被96孔板]
稳定性和保存方法
未使用（在冷藏状态下请不要撕开密封膜）抗原包被袋是同捆的拉链密封袋，请在2-8℃保存。有效期内可稳定保存。
[缓冲液]和[显色液]
稳定性和保存方法
使用部分溶液时将适量液体移至其他容器，其余请不要恢复室温，直接拧紧盖子，置于2-8℃保存。有效期内保持稳定。
[终止液（1M H2SO4）]※注意操作
稳定性和保存方法
将剩余终止液瓶盖拧紧，置于2-8℃保存。有效期内保持稳定。
浓缩试剂类
[浓缩清洗液（10×）]
浓缩清洗液（10×）用室温的蒸馏水10倍稀释，制备成实用稀释倍数1×溶液。
例：100 mL的浓缩清洗液（10×）+900 mL蒸馏水（96孔板全部使用情况下）
稳定性和保存方法
浓缩清洗液（10×）保存时要拧紧瓶盖，置于2-8℃保存。有效期内保持稳定。使用残留的稀释液请废弃。
[标准抗小鼠dsDNA 抗体溶液（10000 mU/mL）］；抗体标准曲线制作用
使用标准抗小鼠dsDNA 抗体溶液（10000 mU/mL）（原液）按下表（例）制成标准溶液。
|
标准溶液容量 |
缓冲液 |
浓度（mU/mL） |
|
原液50 μL |
450 μL |
1000 |
|
1000 mU/mL溶液250 μL |
250 μL |
500 |
|
500 mU/mL溶液250 μL |
250 μL |
250 |
|
250 mU/mL溶液250 μL |
250 μL |
125 |
|
125 mU/mL溶液250 μL |
250 μL |
62.5 |
|
62.5 mU/mL溶液250 μL |
250 μL |
31.3 |
|
31.3 mU/mL溶液250 μL |
250 μL |
15.6 |
|
0（空白） |
250 μL |
0 |
稳定性和保存方法
拆分试剂盒使用前从冷藏柜取出稀释制备，剩余原液不要置于室温，将瓶盖拧紧后，置于2-8℃保存。有效期内保持稳定。稀释的标准溶液直接使用，请不要保存。
[标记抗体（过氧化物酶结合抗小鼠IgG抗体）]
提供充分使用量20 μL。
请将浓缩液用缓冲液稀释2000倍（推荐分2步稀释）
稳定性和保存方法
拆分试剂盒使用前从冷藏柜取出稀释制备，剩余原液不要置于室温，将瓶盖拧紧后，置于2-8℃保存。有效期内保持稳定。剩余稀释液请废弃。
◆样本的制备
本试剂盒可测定小鼠血清或者血浆中抗小鼠dsDNA 抗体浓度。样本请按照常规方法采集的血清或者血浆。除肝素以外的抗凝剂均可使用。请不要使用加热灭活样本。根据测定范围（15.6-1000 mU/mL），利用试剂盒的缓冲液稀释样本。稀释倍数为51倍，101倍，201倍。稀释样本时，预先在试管等容器用缓冲液稀释，然后分装至检测孔中。若怀疑是有干扰物质影响的标本，在同一样本情况下，请稀释100倍以上方可测定。另外，请用不同2个点以上的稀释率确定稀释直线性。浑浊以及含有难溶物的样本需要离心分离除去后方可测定。另外，请不要使用溶血样本和高脂质样本。
稳定性和保存方法
样本采集后立即测定，需要一周内测定时，请保存在2-8℃条件下。另外，长时间保存情况下需要-35℃以下冻存管保存。测定前解冻样本需要充分搅拌，避免反复冻融。此为造成得不到正确结果的原因。
◆测定操作方法
[抗原包被微孔板的密封是，微孔板充分恢复到室温后方可除去。]
1.用预先制备清洗液对每孔加满清洗3遍。然后将板倒扣在纸巾上，轻轻叩击孔板除去残留液体。
2.准（抗体）溶液或者稀释样本溶液，每孔分装100 μL。
3.于微孔板振荡器充分搅拌**。
4.覆盖板盖，室温下静置2小时。
5.反应终止后，除去反应液，用清洗液对每孔加满清洗3遍。然后将板倒扣在纸巾上，轻轻叩击除去残留液体。
6.各板孔中分装标识抗体（过氧化物酶结合抗小鼠IgG抗体）100 μL，置于微孔板振荡器充分搅拌**。
7.覆盖板盖，室温下（20～25℃）静置2小时。
8.反应终止后，除去反应液，用清洗液对每孔清洗3遍*。然后将板倒扣在纸巾上，轻轻叩击除去残留液体。
9.向各孔分装显色液100 μL。置于微孔板振荡器充分搅拌**。
10.覆盖板盖，室温下（20～25℃）静置20分钟。
11.向各板分装终止液100 μL。终止显色反应。
12.将搅拌**后微孔板在分光光度计450 nm处（副波长620 nm）测定吸光度。
13.副波长是600-650 nm范围内使用。
注意
*清洗液的液量值是300 μL/孔。
使用平板清洗器的压力值：5-25 mL/分（取决于喷嘴的直径）
请注意清洗液倒出后的干燥情况。
**搅拌标准：800 rpm-10秒*3次
图1 工作表（例）
|
1&2列 |
3&4列 |
5&6列 |
7&8列 |
9&10列 |
11&12列 |
|
|
A |
100 mU/mL |
阳性对照 |
样本8 |
样本16 |
样本24 |
样本32 |
|
B |
500 mU/mL |
样本1 |
样本9 |
样本17 |
样本25 |
样本33 |
|
C |
250 mU/mL |
样本2 |
样本10 |
样本18 |
样本26 |
样本34 |
|
D |
125 mU/mL |
样本3 |
样本11 |
样本19 |
样本27 |
样本35 |
|
E |
62.5 mU/mL |
样本4 |
样本12 |
样本20 |
样本28 |
样本36 |
|
F |
31.3 mU/mL |
样本5 |
样本13 |
样本21 |
样本29 |
样本37 |
|
G |
15.6 |
样本6 |
样本14 |
样本22 |
样本30 |
样本38 |
|
H |
0 |
样本7 |
样本15 |
样本23 |
样本31 |
样本39 |
◆计算
1.制作抗体标准曲线。使用半对数X轴（Log）表示抗体浓度（mU/mL），Y轴表示吸光度的抗体标准曲线。
2.通过抗体标准曲线，获得稀释样本的吸光度对应的抗体浓度（mU/mL），抗体浓度乘以稀释倍数即为测定值。
*样本的吸光度在标准曲线吸光度以外的情况，用缓冲液进行适当地稀释后再次检测。
*吸光度在标准溶液最高浓度附近的样本需要用缓冲液进行适当地稀释后再次检测。
*计算机软件演算处理推荐使用3阶多项式，或4个参数。
*本试剂盒的测定值为小鼠样本的抗dsDNA 抗体浓度较方便确定的数值，这是使用本公司同一款试剂盒，以及使用其他设备的检测的数据进行比较的数值。小鼠的临床表现是由临床症状和其他的检测结果等进行综合判断。
抗体浓度标准曲线例子。（吸光度会根据测定环境而变化）
*所用酶标仪为SUNRISE RAINBOW(TECAN)
◆测定操作概述
*必须详细阅读操作说明书后再进行检测操作。
● 孔板、试剂类完全恢复到室温。
● 浓缩清洗液的稀释：用室温的蒸馏水稀释10倍。
● 标准溶液的稀释（例）：用室温的缓冲液稀释。
● 阳性对照样本的制作，样本的制作。注：*最高浓度的标准溶液
|
抗原包被96孔板 |
|
|
↓洗净3次* |
|
|
稀释样本或标准(抗体)溶液 |
100 μL |
|
↓搅拌**，室温反应2小时（静置***） ↓清洗3次* 标记抗体（过氧化物结合抗小鼠IgG抗体） 的稀释用室温缓冲液，稀释2000倍 ↓清洗3次* |
|
|
标记抗体（过氧化物酶结合抗小鼠IgG抗体） |
100 μL |
|
↓搅拌**，室温反应2小时（静置***） ↓洗净3次* |
|
|
显色液（TMB） |
100 μL |
|
↓搅拌**，室温反应2小时（静置***） |
|
|
终止液（1M H2SO4）※注意操作 |
100 μL |
|
↓搅拌** |
|
|
吸光度测定（主波长450 nm，副波长620 nm） |
|
|
室温：20~25℃ |
|
*平板清洗机或者用移液枪添加清洗液时的液量值：300 μL/孔
*平板清洗机压力值：5-25 mL/分（取决于喷嘴的直径）
*请注意清洗液倒出后的干燥情况。
**搅拌标准：800 rpm-10秒*3次
**副波长请设定范围为600-650 nm。
***搅拌完毕后在96孔板上覆盖盖板后静置处理。
Q&A
● 全部孔的反应很弱
可能原因
⑴ 未加入标准品和样本。
⑵ 未加入显色相关试剂溶液
⑶ 弄错显色相关试剂溶液或未稀释制备。
⑷ 混入酶抑制剂。
⑸ 试剂盒保存温度的影响（冻存情况）
⑹ 微孔板清洗过度。
⑺ 显色液温度过低。
● 空白OD值比最小标准溶液浓度（15.6 mU/mL）的OD值高。
可能原因
清洗不当，清洗不完全。
（过氧化物酶结合抗体反应后清洗次数按照同样流速增加到4-6次。）
● 变动系数（CV）大
可能原因
① 清洗不当，清洗不完全。
② 准品和管理血清或者样本搅拌不充分。（请充分搅拌冻存样本）
③ 移液器操作不一致。
Q1：试剂盒拆分之后能使用吗？
A1：可以。请使用切割工具将贴在平板的透明密封条带切割分开。不用的平板需要密封后保存在冷藏柜中。
Q2：要是取出平板时孔中有液体，究竟是什么？
A2：出货时填充的保存稳定液。
|
[1] |
Original reports |
||||||||||||||||
|
Parasites alter the pathological phenotype of lupus nephritis |
|||||||||||||||||
|
Miyake. K.., Adachi. K.., Watanabe. M., Sasatomi. Y., Ogahara. S., Abe. Y., Ito. K., Dan Justin. YK., Saito. T., Nakashima. H. and Hamano. S. |
|||||||||||||||||
|
Autoimmunity, 24:1-10, Jun. 2014. |
|||||||||||||||||
|
[2] |
Reactivity of autoantibodies against not only erythrocytes but also hepatocytes in sera of mice with malaria |
||||||||||||||||
|
Kanda. Y., Kawamura. T., Kobayashi. T., Kawamura. H., Watanabe. H., Abo. T. |
|||||||||||||||||
|
Cellular Immunology, Vol.289(1-2), p162-166, May-Jun 2014. |
|||||||||||||||||
|
[3] |
Epicutaneous Application of Toll-like Receptor 7 Agonists Leads to Systemic Autoimmunity in Wild-Type Mice: A New Model of Systemic Lupus Erythematosus |
||||||||||||||||
|
Yokogawa. M.,Takaishi. M., Nakajima. K., Kamijima. R., Fujimoto. C., Kataoka. S., Terada. Y. and Sano. S. |
|||||||||||||||||
|
Arthritis & Rheumatology, Vol.66(3), p694-706, Mar. 2014. |
|||||||||||||||||
|
[4] |
Deficient Leptin Signaling Ameliorates Systemic Lupus Erythematosus Lesions in MRL/Mp-Faslpr Mice |
||||||||||||||||
|
Fujita. Y., Fujii. T., Mimori. T., Sato. T., Nakamura. T., Iwao. H., Nakajima A., Miki. M., Sakai. T., Kawanami. T., Tanaka. M., Masaki. Y., Fukushima. T., Okazaki. T. and Umehara. H. |
|||||||||||||||||
|
The Journal of Immunology, Vol.192(3), p979-984, Feb. 2014. |
|||||||||||||||||
|
[5] |
Autoimmune disorder phenotypes in Hvcn1-deficient mice |
||||||||||||||||
|
Sasaki. M., Tojo. A., Okochi. Y., Miyawaki. N., Kamimura. D., Yamaguchi. A., Murakami. M., and Okamura. Y. |
|||||||||||||||||
|
Biochem. J. Vol.450(2), p295-301, Mar. 2013. |
|||||||||||||||||
|
[6] |
Overexpression of Epstein-Barr virus-induced gene 3 protein (EBI3) in MRL/lpr mice suppresses their lupus nephritis by activating regulatory T cells |
||||||||||||||||
|
Nishimura Shinsuke and Inoue Hiroshi. |
|||||||||||||||||
|
Autoimmunity, 2013. |
|||||||||||||||||
|
[7] |
Suppression of glomerulonephritis in lupus prone NZB/W mice by RN486, a selective inhibitor of Bruton's Tyrosine Kinase |
||||||||||||||||
|
P.Mina-Osorio, J.LaStant, N.Keirstead, T.Whittard, J.Ayala, S.Stefanova, R. Garrido, N. Dimaano, H. Hilton, M. Giron, K.-Y.Lau, J.Hang, J.Postelnek,Y.Kim, S.Min, A. Patel, J.Woods, M.Ramanujam, J.DeMartino, S.Narula, D.Xu. |
|||||||||||||||||
|
Arthritis & Rheumatism, 2013. |
|||||||||||||||||
|
[8] |
Galectin-9 Ameliorates Clinical Severity of MRL/lpr Lupus-Prone Mice by Inducing Plasma Cell Apoptosis Independently of Tim-3 |
||||||||||||||||
|
M.Moritoki, T.Kadowaki, T.Niki, D.Nakano, G.Soma, H.Mori, H.Kobara, T.Masaki, M.Kohno, M.Hirashima. |
|||||||||||||||||
|
PLOS one, 2013. |
|||||||||||||||||
|
[9] |
Runx1 Deficiency in CD4+ T Cells Causes Fatal Autoimmune Inflammatory Lung Disease Due to Spontaneous Hyperactivation of Cells |
||||||||||||||||
|
W.F.Wong, K.Kohu, A.Nakamura, M.Ebina, T.Kikuchi, R.Tazawa, K.Tanaka, S.Kon, T.Funaki, A.Sugahara-Tobinai, C.Y.Looi, S.Endo, R.Funayama,M.Kurokawa, S.Habu, N.Ishii, M.Fukumoto, K.Nakata, T.Takai and M.Satake |
|||||||||||||||||
|
The Journal of Immunology, Vol.188(11), p5408-5420, Jun 2012. |
|||||||||||||||||
|
[10] |
Dendritic Cell-Specific Ablation of the Protein Tyrosine Phosphatase Shp1 Promotes Th1 Cell Differentiation and Induces Autoimmunity |
||||||||||||||||
|
T.Kaneko, Y.Saito, T.Kotani, H.Okazawa, H.Iwamura, M.Sato-Hashimoto, Y.Kanazawa, S.Takahashi, K.Hiromura, S.Kusakari, Y.Kaneko, Y.Murata,H.Ohnishi, Y. Nojima, K.Takagishi and T. Matozaki |
|||||||||||||||||
|
The Journal of Immunology, Vol.188(11), p5397-5407, Jun 2012. |
|||||||||||||||||
|
[11] |
Autoimmune disorder phenotypes in Hvcn1-deficient mice |
||||||||||||||||
|
Sasaki M, Tojo A, Okochi Y, Miyawaki N, Kamimura D, Yamaguchi A, Murakami M and Okamura Y. |
|||||||||||||||||
|
Biochem. J. Vol.450, p295-301, 2013. |
|||||||||||||||||
|
[12] |
Eradication of Metastatic Renal Cell Carcinoma after Adenovirus-Encoded TNF-Related Apoptosis-Inducing Ligand (TRAIL)/CpG Immunotherapy |
||||||||||||||||
|
L. A. Norian., T. P. Kresowik., H. M. Rosevear., B. R. James., T. R. Rosean., A. J. Lightfoot., T. A. Kucaba., C. Schwarz., C. J. Weydert., M. D. Henry., T. S. Griffith. |
|||||||||||||||||
|
PLos One 7(2):e31085. 2012 |
|||||||||||||||||
|
[13] |
Reversal of serologic, immunologic, and histologic dysfunction in mice with systemic lupus erythematosus by long-term serial adipose tissue-derived mesenchymal stem cell transplantation |
||||||||||||||||
|
E.W. Choi., Il S. Shin., S. Y. Park., J. H. Park., J. S. Kim., E. J. Yoon., S. K. Kang., J. C. Ra., S. H. Hong. |
|||||||||||||||||
|
Arthritis & Rheumatism Vol. 64, Issue 1, pages 243-253, 2012 |
|||||||||||||||||
|
[14] |
Serum soluble MD-1 levels increase with disease progression in autoimmune prone MRLlpr/lpr mice |
||||||||||||||||
|
S. Sasakia., Y. Nagaia., T. Yanagibashia., Y. Watanabea., M. Ikutania., A. Kariyonea., K. Tsuneyamab., Y. Hiraia., K. Takatsua. |
|||||||||||||||||
|
Molecular Immunology Vol.49,Issue4,611-620, 2012 |
|||||||||||||||||
|
[16] |
Deamidation of Gliadin Peptides in Lamina Propria: Implications for Celiac Disease |
||||||||||||||||
|
H. Skovbjerg., D. Anthonsen., E. Knudsen. and H. Sjostrom. |
|||||||||||||||||
|
J of Clinical Immunology Vol.31 ( 6) 1038-1044 , 2011 |
|||||||||||||||||
|
[17] |
Transgenic Mice that Overexpress Human IL-15 in Enterocytes Recapitulate Both B and T Cell-Mediated Pathologic Manifestations of Celiac Disease |
||||||||||||||||
|
S. Yokoyama., K. Takada., M. Hirasawa., L. P. Perera., and T. Hiroi. |
|||||||||||||||||
|
J of Clinical Immunology Vol. 31,(6) , 2011 |
|||||||||||||||||
|
[18] |
Coincidence of autoantibody production with the activation of natural killer T cells in a-galactosylceramide-mediated hepatic injury |
||||||||||||||||
|
H. Matsumoto., T. Kawamura., T. Kobayashi., Y. Kanda., H. Kawamura., T. Abo. |
|||||||||||||||||
|
Immunology Vol. 133, Issue 1, pages 21-28, 2011 |
|||||||||||||||||
|
[19] |
Lack of B and T lymphocyte attenuator exacerbates autoimmune disorders and induces Fas-independent liver injury in MRL-lpr/lpr mice |
||||||||||||||||
|
Y. Oya., N. Watanabe. Y. Kobayashi., T. Owada., M. Oki., K. Ikeda. A. Suto., S. Kagami., K. Hirose., T. Kishimoto., and H. Nakajima. |
|||||||||||||||||
|
Int. Immunol 23 (5): 335-344, 2011 |
|||||||||||||||||
|
[20] |
Amelioration of systemic lupus erythematosus by withangulatin A in MRL/lpr mice |
||||||||||||||||
|
L. Sun., L. Zhou., M. Chen., R. Zhong., J. Liu. |
|||||||||||||||||
|
Journal of Cellular Biochemistry Vol. 112, Issue 9, pages 2376-2382, 2011 |
|||||||||||||||||
|
[21] |
Co-appearance of autoantibody-producing B220low B cells with NKT cells in the course of hepatic injury |
||||||||||||||||
|
Y. Fujii., H. Kawamura., T. Kawamura., Y. Kanda.,H. Matsumoto., T. Kobayashi., T. Yamamoto., T. Aoyama., T. Abo. |
|||||||||||||||||
|
Cellular Immunology Vol.260,Issue2, 105-112, 2010 |
|||||||||||||||||
|
[22] |
Identification and characterization of autoantibody-producing B220low B (B-1) cells appearing in malarial infection |
||||||||||||||||
|
Y. Kanda., H. Kawamura., H. Matsumoto., T. Kobayashi., T. Kawamura., T. Abo. |
|||||||||||||||||
|
Cellular Immunology Vol.263,Issue1, 49-54, 2010 |
|||||||||||||||||
|
[23] |
Transplantation of umbilical cord mesenchymal stem cells alleviates lupus nephritis in MRL/lpr mice |
||||||||||||||||
|
Z. Gu., K. Akiyama., X. Ma., H. Zhang., X. Feng., G. Yao., Y. Hou., L. Lu., GS. Gilkeson., RM. Silver., X. Zeng., S. Shi., L. Sun |
|||||||||||||||||
|
Lupus Vol.19 No.13, 1502-1514, 2010 |
|||||||||||||||||
|
[24] |
Augmented TLR9-induced Btk activation in PIR-B-deficient B-1 cells provokes excessive autoantibody production and autoimmunity |
||||||||||||||||
|
T. Kubo., Y. Uchida., Y. Watanabe., M. Abe., A. Nakamura., M. Ono., S. Akira., and T. Takai. |
|||||||||||||||||
|
J of Experimental Medicine Vol.206 No.9 1971-1982, 2009 |
|||||||||||||||||
|
[25] |
Deficiency in EBV-induced gene 3 (EBI3) in MRL/ lpr mice results in pathological alteration of autoimmune glomerulonephritis and sialadenitis |
||||||||||||||||
|
T. Igawa., H. Nakashima., A. Sadanaga., K. Masutani., K. Miyake., S. Shimizu., A. Takeda., S. Hamano., and H. Yoshida. |
|||||||||||||||||
|
Modern Rheumatology Vol. 19, Number 1, 33-41, 2009 |
|||||||||||||||||
|
[26] |
Oncostatin M deficiency leads to thymic hypoplasia, accumulation of apoptotic thymocytes and glomerulonephritis |
||||||||||||||||
|
E. Esashi1., H. Ito., K. Minehata., S. Saito., Y. Morikawa., A. Miyajima. |
|||||||||||||||||
|
European Journal of Immunology Vol.39,Issue6, 1664-1670, 2009 |
|||||||||||||||||
|
[27] |
Amelioration of human lupus-like phenotypes in MRL/lpr mice by overexpression of interleukin 27 receptor a (WSX-1) |
||||||||||||||||
|
N. Sugiyama., H. Nakashima., T. Yoshimura., A. Sadanaga., S. Shimizu., K. Masutani., T. Igawa., M. Akahoshi., K. Miyake., A. Takeda., A. Yoshimura., S. Hamano., H. Yoshida. |
|||||||||||||||||
|
Ann Rheum Dis 67:1461-1467, 2008 |
|||||||||||||||||
|
[28] |
Development of autoantibody responses in NC/Nga mice: its prevention by pulverized konjac glucomannan feeding |
||||||||||||||||
|
N. Onishi., S. Kawamoto., H. Suzuki., M. Hide., and K. Ono. |
|||||||||||||||||
|
Archives of Dermatological Research Vol.300, 95-99, 2008 |
|||||||||||||||||
|
[29] |
CD19 Regulates Skin and Lung Fibrosis via Toll-Like Receptor Signaling in a Model of Bleomycin-Induced Scleroderma |
||||||||||||||||
|
A. Yoshizaki., Y. Iwata., K. Komura., F. Ogawa., T. Hara., E. Muroi., M. Takenaka., K. Shimizu., M. Hasegawa., M. Fujimoto., T. F. Tedder., and S. Sato. |
|||||||||||||||||
|
Am J Pathol. 172(6): 1650-1663, 2008 |
|||||||||||||||||
|
[30] |
Protection against autoimmune nephritis in MyD88-deficient MRL/lpr mice |
||||||||||||||||
|
A. Sadanaga., H. Nakashima., M. Akahoshi., K. Masutani., K. Miyake., T. Igawa., N. Sugiyama., H. Niiro., M. Harada. |
|||||||||||||||||
|
Arthritis & Rheumatism Vol.56, Issue 5, pages 1618-1628, 2007 |
|||||||||||||||||
|
[31] |
Chronic polyarthritis caused by mammalian DNA that escapes from degradation in macrophages. |
||||||||||||||||
|
Kawane, K., Ohtani, M., Miwa, K., Kizawa, T., Kanbara, Y., Yoshioka, Y., and Yoshikawa, H. |
|||||||||||||||||
|
Nature 443: 998-1002, 2006 |
|||||||||||||||||
|
[32] |
Altered cytokine expression in mesenteric lymph nodes in a rat strain (Matsumoto Eosinophilic Shinshu) that spontaneously develops hypereosinophilia |
||||||||||||||||
|
S. Muto., M. Monnai., Y. Okuhara., M. Murakami., J. Kuroda., T. Ono., K. Matsumoto. |
|||||||||||||||||
|
Immunology Vol. 116, Issue 3, pages 373-380, 2005 |
|||||||||||||||||
|
[33] |
Amelioration of autoimmune nephritis by imatinib in MRL/lpr mice |
||||||||||||||||
|
Sadanaga, A., Nakashima, H., Masutani, K., Miyake, K., shimizu, S., Igawa, T., Sugiyama, N., Niiro, H., Hirakata, H., and Harada, M. |
|||||||||||||||||
|
Arthritis Rheumatism 52: 3987-3996, 2005 |
|||||||||||||||||
|
[34] |
Membranous glomerulonephritis development with Th2-type immune deviations in MRL/lpr mice deficient for IL-27 receptor (WSX-1) |
||||||||||||||||
|
Shimizu, S., Sugiyama, N., Matsutani, K., Sadanaga, A., Miyazaki, Y., Inoue, Y., Akaboshi, M., Katafuchi, R., Hirakata, H., Harada. M., Hamano, S., Nakashima, H., and Yoshida, H. |
|||||||||||||||||
|
J Immunol 175:7185-7192, 2005 |
|||||||||||||||||
|
[35] |
Glucose intolerance in young TallyHo mice is induced by leptin-mediated inhibition of insulin. |
||||||||||||||||
|
Sung, Y.Y., Lee, Y.S., Jung, W.H., Kim, H.Y., Cheon, H.G., Yang, S.D., and Rhee, S.D. |
|||||||||||||||||
|
Biochem Biopys Res Commun. 338: 1779-1787, 2005 |
|||||||||||||||||
|
[36] |
Requirement for CD100-CD72 interactions in fine-tubing of B-cell antigen receptor signaling and homeostatic maintenance ofthe B-cell compartment. |
||||||||||||||||
|
Kumanogoh, A., Shikina, T., Watanabe, C., Takegahara, N., Suzuki, K., Yamamoto, M., Takamatsu, H., Prasad, D.V.R., Mizui, M., Toyohuku, T., Tamaru, M., Watanabe, D., Parnes, J.R., and Kikutani, H. |
|||||||||||||||||
|
International Immuno, 17: 1277-1282, 2005 |
|||||||||||||||||
|
[37] |
Chemical induction of HO-1 suppresses lupus nephritis by reducing local iNOS expression and synthesis of anti-dsDNA antibody. |
||||||||||||||||
|
Takeda, Y., Takeno, M., Iwasaki, M., Kobayashi, H., Kirino, Y., Ueda, A., Nagahama, K., Aoki, I., and Ishigatsubo, Y |
|||||||||||||||||
|
Clin Exp Immunol. 138:237-244, 2004 |
|||||||||||||||||
|
[38] |
The point mutation of tyrosine 759 of the IL-6 family cytokine receptor gp130 synergizes with HTLV-1 pX in promoting rheumatoid arthritis-like arthritis. |
||||||||||||||||
|
Ishihara, K., Sawa, S., Ikushima, H., Hirota, S., Atsumi, T., Kamimura, D., Park, S.J., Murakami, M., Kitanuma, Y., Iwakura, Y., and Hirano, T. |
|||||||||||||||||
|
International Immunol. 16: 455-465, 2004 |
|||||||||||||||||
|
[39] |
Inadequate induction of suppressor of cytokine signaling-1 causes systemic autoimmune disease |
||||||||||||||||
|
Fujimoto, M., Tsutsui, H., Xinshou, O., Tokumoto, M., Watanabe, D., Shima, Y., Yoshimoto, T., Hirakata, H., Kawase, I., Nakanishi, K., Kishimoto, T., and Naka, T. |
|||||||||||||||||
|
International Immunol. 16: 303-314, 2004 |
|||||||||||||||||
|
[40] |
Suppressor of cytokine signaling-1 is essential for suppressing dendritic cell activation and systemic autoimmunity. |
||||||||||||||||
|
Hanada, T., Yoshida, H., Kato, S., Tanaka, K., Matsutani, K., Tsukada, J., Nomura, Y., Mimata, H., Kubo, M., and Yoshimura, A. |
|||||||||||||||||
|
[41] |
Association of Cathepsin E Deficiency with Development of Atopic Dermatitis |
||||||||||||||||
|
Tsukuba et al. |
|||||||||||||||||
|
J Biochem (Tokyo). 134: 893-902, 2003 |
|||||||||||||||||
|
[42] |
Fc RIIB deficiency with Fas mutation is sufficient for the development of systemic autoimmune disease. |
||||||||||||||||
|
Yajima, K., Nakamura, A., Sugahara, A., and Takai, T. |
|||||||||||||||||
|
Eur J Immunol, 33:(4) 1020-1029, 2003 |
|||||||||||||||||
|
[43] |
A Point Mutation of Tyr-759 in Interleukin 6 Family Cytokine Receptor Subunit gp130 Causes Autoimmune Arthritis |
||||||||||||||||
|
T. Atsumi., K. Ishihara., D. Kamimura., H. Ikushima., T. Ohtani., S. Hirota., H. Kobayashi., S. Park., Y. Saeki., Y. Kitamura. and T. Hirano |
|||||||||||||||||
|
J Exp Med, 196, Number 7, 979-990, 2002 |
|||||||||||||||||
|
[44] |
A novel assay kits for autoantibodies rate on spontaneous autoimmune model mice. |
||||||||||||||||
|
Kikukawa, T, Kojima, M., and Abe, C. |
|||||||||||||||||
|
Jap J Inflammation 20: 697-701, 2000 |
|||||||||||||||||
| 产品编号 | 产品名称 | 产品规格 | 产品等级 |
| 631-02699 | LBIS® Mouse Anti-dsDNA ELISA Kit LBIS® 抗dsDNA-小鼠ELISA试剂盒 |
96 tests | － |
独特的抗体应用于WB实验中检测活化的小鼠 Caspase-1
Caspase-1 是描述炎症的优质 caspase。它能提炼细胞因子 interleukin-1β（IL-1β）和 IL-18，并诱导 pyroptotic 细胞死亡。 Caspase-1 由多蛋白复合物激活，由于在不同的炎症中都能检测到，所以被称为针对多种刺激的炎症小体。NLRC4 对胞质鞭毛蛋白反应，鼠源 NLRP1b 对炭疽致死毒素反应，AIM2 对细胞质DNA反应，NLRP3 则对包括晶体在内各种激动剂反应。
◆特点
● 纯化的小鼠单克隆抗体（mAbs）
● CASPER-1（p10）检测内源性全长片段&活化的p20片段
● CASPER-2（p20）检测内源性全长片段&活化的p10片段
● 监控炎症小体活性的优质工具
● 经过炎症领域专家的测试验证
◆案例应用
图：抗体anti-Caspase-1（p10）（mouse），mAb（Casper-2）应用于免疫印迹实验中检测Mouse Caspase-1（p10）。
方法：从野生型小鼠和Caspase-1基因敲除小鼠中提取骨髓树突状细胞进行分化培养，用5 μM（Nigericin）处理30分钟，使用WB方法检测细胞
上清中Caspase-1是否活化并表达蛋白。在还原条件下，用SDS-PAGE分离上清液（30 μL），转移到硝酸纤维素膜后，用anti-Caspase-1
（p10）（mouse），mAb（Casper-2）（1 μg /mL）孵育，最后化学发光进行检测。
图：抗体anti-Caspase-1（p20）（mouse），mAb（Casper-1）应用于免疫印迹实验中检测
图：Mouse Caspase-1（p20）。
方法：对细胞提取物和从野生型小鼠分化骨髓来源树突状细胞（BMDCs）进行分化培养，用 5 μM（Nigericin）处理 30分钟，使用WB方法检测
细胞上清中NLRP3-/-和caspase-1-/- 小鼠是否活化并表达蛋白。在还原条件下，用SDS-PAGE分离细胞提取物和上清液，转移到硝酸纤维
素膜后，用anti-Caspase-1（p20）（mouse），mAb（Casper-1）（1 μg /mL）孵育，最后化学发光进行检测。
图： 抗体 anti-Caspase-1（p20）（mouse），mAb（Casper-1） 应用于免疫组化实验中染色小鼠脾的内源性小鼠 Caspase-1。
方法： 通过标准免疫组化（用柠檬酸钠进行抗原修复），使用anti-Caspase-1（p20）（mouse），mAb（Casper-1）（货号：AG-20B-0042）
（1：500），使小鼠来源的 Caspase-1 KO（左）或者WT（右）的小鼠脾组织（石蜡切片）染色。
◆产品列表
|
产品名称 |
产品编号 |
规格 |
|
anti-Caspase-1 (p10) (mouse), mab (Casper-2) |
AG-20B-0044-C100 |
100 μg |
|
AG-20B-0044B-C100 |
100 μg |
|
|
anti-Caspase-1 (p20) (mouse), mab (Casper-1) |
AG-20B-0042-C100 |
100 μg |
|
AG-20B-0042B-C100 |
100 μg |
|
|
anti-Caspase-1 (p20) (human), mab (Bally-1) |
AG-20B-0048-C100 |
100 μg |
|
AG-20B-0048B-C100 |
100 μg |
| 产品编号 | 产品名称 | 产品规格 | 产品等级 |
| AG-20B-0044-C100 | anti-Caspase-1 (p10) (mouse), mAb (Casper-2) 抗小鼠Caspase-1 (p10) 单抗(Casper-2) |
100 μg | – |
| AG-20B-0044B-C100 | anti-Caspase-1 (p10) (mouse), mAb (Casper-2) (Biotin) 抗小鼠Caspase-1 (p10) 单抗(Casper-2) (生物素标记) |
100 μg | – |
| AG-20B-0042-C100 | anti-Caspase-1 (p20) (mouse), mAb (Casper-1) 抗小鼠Caspase-1 (p20)单抗(Casper-1) |
100 μg | – |
| AG-20B-0042B-C100 | anti-Caspase-1 (p20) (mouse), mAb (Casper-1) (Biotin) 抗小鼠Caspase-1 (p20)单抗(Casper-1) (生物素标记) |
100 μg | – |
| AG-20B-0048-C100 | anti-Caspase-1 (p20) (human), mAb (Bally-1) 抗人Caspase-1 (p20)单抗(Bally-1) |
100 μg | – |
| AG-20B-0048B-C100 | anti-Caspase-1 (p20) (human), mAb (Bally-1) (Biotin) 抗人Caspase-1 (p20)单抗(Bally-1) (生物素标记) |
100 μg | – |
LBIS® Leptin-Mouse
LBIS® 小鼠瘦素 ELISA 试剂盒
瘦素（Leptin）是一种分子量为16KD的蛋白质类激素。主要由白色脂肪组织产生，其它组织如褐色脂肪组织、胎盘、卵巢、骨骼肌、胃底部、乳腺上皮细胞、骨髓、下垂体、肝脏等也能检测到。其在大鼠和小鼠中有97％的同源性。瘦素在突变种肥胖小鼠中发现，是通过调节食欲和新陈代谢来参与至能量平衡的一种重要的激素。血液中瘦素的浓度会因为空腹和低热量饮食而降低，但进食后并不会有明显增加，只有肥胖即脂肪组织量增大的情况下才会增加，可反映身体脂肪量。瘦素进入大脑，通过抑制体内下丘脑神经肽Y（NPY）和刺鼠基因相关蛋白（AgRP）表达神经的受体，另外活化体内 α-MSH 表达神经，起到降低食欲，减少进食的作用。但是，对于严重肥胖的人，虽然他们血液中瘦素的浓度很高，但对瘦素有抗性，瘦素并不能发挥抑制食欲的作用。全身性脂肪萎缩病引起的瘦素降低或缺乏，会造成胰岛素抗性、糖尿病、脂肪肝、高甘油三酯血症等疾病。除此之外，瘦素也被认为与对动脉粥样硬化的免疫反应、能量平衡和性周期相关，与肺泡表面活性剂的产生也有关系。
◆特点
• 短时间测定（总的反应时间：３小时）
• 微量样品（标准操作：10 μL）可测
• 使用对环境无害的防腐剂
• 全部试剂均为液体，可直接使用
• 精密的测定精度和高再现性
◆构成
|
组成 |
状态 |
容量 |
|
(A)抗体固相化 96 孔板（干燥孔板） |
洗净后使用 |
96 wells（8×12）/1 块 |
|
(B)瘦素标准溶液（小鼠）（5,000 pg/mL） |
稀释后使用 |
500 μL/1 瓶 |
|
(C)缓冲液 |
即用 |
60 mL/1 瓶 |
|
(D)生物素结合抗瘦素抗体 |
稀释后使用 |
200 μL/1 瓶 |
|
(E)过氧化物・抗生物素蛋白结合物 |
稀释后使用 |
200 μL/1 瓶 |
|
(F)显色液（TMB） |
即用 |
12 mL/1 瓶 |
|
(H)反应终止液（1M H2SO4）※小心轻放 |
即用 |
12 mL/1 瓶 |
|
( I )浓缩洗净液（10×） |
稀释后使用 |
100 mL/1 瓶 |
|
封板膜 |
3 张 |
|
|
使用说明书 |
1 份 |
◆交叉反应
※交叉反应是浓度为 3,000 pg/mL 时的数据
|
动物种类 |
对象物质 |
反应性和反应率（％） |
|
Mouse |
Leptin |
100 |
|
α-MSH |
― |
|
|
IFN-γ |
― |
|
|
MCH |
― |
|
|
TNF-α |
― |
|
|
Rat |
Leptin |
31.5 |
|
Human |
Lepin |
＋ |
＋：存在交叉反应
―：不存在交叉反应
◆样品信息
小鼠的血清、血浆
10 μL/well（标准操作）
※样品量在10～50 μL范围内可以配制
◆测量范围
20.6～5,000 pg/mL（样品量50 μL）
103~25,000 pg/mL（样品量10 μL）
◆Validation data
精度测试（检测内变动系数）
|
样品 |
A |
B |
C |
|
1 |
3818 |
846 |
405 |
|
2 |
3810 |
856 |
405 |
|
3 |
3979 |
842 |
394 |
|
4 |
4047 |
851 |
392 |
|
5 |
4046 |
856 |
420 |
|
mean |
3940 |
850 |
403 |
|
SD |
118 |
6.18 |
11.2 |
|
CV(%) |
3.0 |
0.73 |
2.8 |
单位：pg/mL
再现性测试（检测内变动系数）
|
测量日/样品 |
D |
E |
|
第０天 |
5007 |
1052 |
|
第１天 |
5126 |
1063 |
|
第２天 |
5069 |
1027 |
|
第３天 |
5000 |
1000 |
|
mean |
5051 |
1035 |
|
SD |
59.3 |
28.0 |
|
CV(%) |
1.2 |
2.7 |
单位：pg/mL n=2
添加回收测试
样品F
|
添加量 |
实测值 |
回收量 |
回收率(%) |
|
0.00 |
994.9 |
– |
– |
|
337 |
1334.0 |
339.1 |
101 |
|
1061 |
2099.0 |
1104 |
104 |
|
1238 |
2284.0 |
1289 |
104 |
单位：pg/mL n=2
样品G
|
添加量 |
实测值 |
回收量 |
回收率(%) |
|
0.00 |
1996 |
– |
– |
|
2731 |
4741 |
2745 |
101 |
|
4682 |
6444 |
4448 |
95.0 |
|
5462 |
7717 |
5721 |
105 |
单位：pg/mL n=2
稀释直线性测试
用稀释缓冲液分5次连续稀释2个血清样品的测量结果，线性回归方程的R2在0.9992~0.9997之间。
欲了解更多相关产品信息，请点击文字：LBIS® 疾病相关动物模型ELISA试剂盒系列
相关资料
 |
 |
 |
| 说明书 |
ELISA试剂盒选择指南①② |
ELISA试剂盒选择指③④ |
参考文献
|
1. |
Inhibition of Gastric Inhibitory Polypeptide Receptor Signaling in Adipose Tissue Reduces Insulin Resistance and Hepatic Steatosis in High-Fat Diet-Fed Mice. Joo E, Harada N, Yamane S, Fukushima T, Taura D, Iwasaki K, Sankoda A, Shibue K, Harada T, Suzuki K, Hamasaki A, Inagaki N. Diabetes. 2017 Apr;66(4):868-879 |
|
2. |
DNA Methylation Suppresses Leptin Gene in 3T3-L1 Adipocytes. Kuroda M, Tominaga A, Nakagawa K, Nishiguchi M, Sebe M, Miyatake Y, Kitamura T, Tsutsumi R, Harada N, Nakaya Y, Sakaue H. PLoS One. 2016 Aug 5;11(8):e0160532. |
|
3. |
Sodium alginate prevents progression of non-alcoholic steatohepatitis and liver carcinogenesis in obese and diabetic mice. Miyazaki T, Shirakami Y, Kubota M, Ideta T, Kochi T, Sakai H, Tanaka T, Moriwaki H, Shimizu M. Oncotarget. 2016 Mar 1;7(9):10448-58. |
|
4. |
Comparison of two Kampo medicines in a diet-induced mouse obesity model. Fengying Gao, Satoru Yokoyama, Makoto Fujimoto, Koichi Tsuneyama, Ikuo Saiki, Yutaka Shimada andYoshihiro Hayakawa. Traditional & Kampo Medicine, Volume 2, Issue 2, pages 60–66, September 2015 |
|
5. |
Effect of Keishibukuryogan on Genetic and Dietary Obesity Models. Fengying Gao, Satoru Yokoyama, Makoto Fujimoto, Koichi Tsuneyama, Ikuo Saiki, Yutaka Shimada, and Yoshihiro Hayakawa. Evid Based Complement Alternat Med. 2015; 2015: 801291. |
|
6. |
Overexpression of the adiponectin gene mimics the metabolic and stress resistance effects of calorie restriction, but not the anti-tumor effect. Kamohara R, Yamaza H, Tsuchiya T, Komatsu T, Park S, Hayashi H, Chiba T, Mori R, Otabe S, Yamada K, Nagayasu T, Shimokawa I. Exp Gerontol. 2015 Apr;64:46-54. |
|
7. |
Preventive effects of astaxanthin on diethylnitrosamine-induced liver tumorigenesis in C57/BL/KsJ-db/db obese mice. Ohno T, Shimizu M, Shirakami Y, Miyazaki T, Ideta T, Kochi T, Kubota M, Sakai H, Tanaka T, Moriwaki H. Hepatol Res. Jul 2015. |
|
8. |
Sudachitin, a polymethoxylated flavone, improves glucose and lipid metabolism by increasing mitochondrial biogenesis in skeletal muscle. Tsutsumi R, Yoshida T, Nii Y, Okahisa N, Iwata S,Tsukayama M, Hashimoto R, Taniguchi Y, Sakaue H, Hosaka T, Shuto E, Sakai T. Nutrition & Metabolism, 11:32, Jul 2014. |
|
9. |
Type 2 diabetic conditions in Otsuka Long-Evans Tokushima Fatty rats are ameliorated by 5-aminolevulinic acid. Sato T, Yasuzawa T, Uesaka A, Izumi Y, Kamiya A, Tsuchiya K, Kobayashi Y, Kuwahata M, Kido Y. Nutr Res. Vol.34(6), p544-551, Jun 2014. |
|
10. |
Inhibitory Effects of Japanese Herbal Medicines Sho-saiko-to and Juzen-taiho-to on Nonalcoholic Steatohepatitis in Mice. Takahashi Y, Soejima Y, Kumagai A, Watanabe M, Uozaki H, Fukusato T. PLoS One. 2014 Jan 22;9(1):e87279. |
|
11. |
Down-Regulation of Hepatic Stearoyl-CoA Desaturase-1 Expression by Fucoxanthin via Leptin Signaling in Diabetic/Obese KK-A y Mice. Beppu F., Hosokawa M., Yim M-J., Shinoda T., Miyashita K. Lipids, Vol.48(5), p449-455, May 2013. |
|
12. |
Dietary Combination of Fish Oil and Taurine Decreases Fat Accumulation and Ameliorates Blood Glucose Levels in Type 2 Diabetic/Obese KK-Ay Mice. N. Mikami., M. Hosokawa., K. Miyashita. Journal of Food Science, Vol. 77(6), pH114-H120, Jun 2012. |
|
13. |
Effects of Gametophytes of Ecklonia Kurome on the Levels of Glucose and Triacylglycerol in db/db, Prediabetic C57BL/6J and IFN-γ KO Mice. F. Dwiranti., M. Hiraoka., T. Taguchi., Y. Konishi., M. Tominaga., A. Tominaga. Int J B 64 iomed Sci, Vol.8, No.1, Mar 2012. |
|
14. |
Overexpression of FoxO1 in the Hypothalamus and Pancreas Causes Obesity and Glucose Intolerance. H.-J. Kim., M. Kobayashi., T. Sasaki., O. Kikuchi., K. Amano., T. Kitazumi., Y.-S. Lee., H. Yokota-Hashimoto., V. Y. Susanti., Y. Ido Kitamura., J. Nakae., and T. Kitamura. Endocrinology, Vol.153, No.2, p659-671, Feb 2012. |
|
15. |
Spirulina improves non-alcoholic steatohepatitis, visceral fat macrophage aggregation, and serum leptin in a mouse model of metabolic syndrome. M. Fujimoto., K. Tsuneyama., T. Fujimoto., C. Selmid., M. E. Gershwin., Y. Shimada. Digestive and Liver Disease, 2012. |
|
16. |
Prevention mechanisms of glucose intolerance and obesity by cacao liquor procyanidin extract in high-fat diet-fed C57BL/6 mice. Y. Yamashita., M. Okabe., M. Natsume., H. Ashida. Archives of Biochemistry and Biophysics, 2012. |
|
17. |
Preventive Effects of Curcumin on the Development of Azoxymethane-Induced Colonic Preneoplastic Lesions in Male C57BL/KsJ-db/db Obese Mice. M. Kubota., M. Shimizu., H. Sakai., Y. Yasuda., D. Terakura., A. Baba., T. Ohno., H. Tsurumi., T. Tanaka., H. Moriwaki. Nutrition and Cancer, Vol. 64(1), 2012. |
|
18. |
Caffeic Acid Phenethyl Ester Suppresses the Production of Adipocytokines, Leptin, Tumor Necrosis Factor -Alpha and Resistin, during Differentiation to Adipocytes in 3T3-L1 Cells. S, Juman., N, Yasui., H, Okuda., A,Ueda., H, Negishi., T, Miki. and K, Ikeda. Biological and Pharmaceutical Bulletin Vol. 34 (2011) , No.4, 490. |
|
19. |
Mate Tea(Ilex paraguariensis)Promotes Satiety and Body Weight Lowering in Mice:Involvement of Glucagon-Like Peptide-1. G, M, E, Hussein., H, Matsuda., S, Nakamura., M, Hamao., T, Akiyama., K, Tamura., and M, Yoshikawa. Biol.Pharm.Bull. Vol.34(12), p1849-1855, 2011. |
| 产品编号 | 产品名称 | 产品规格 | 产品等级 |
| 631-10389 | （AKRLP-011）LBIS® Mouse Leptin ELISA kit LBIS®小鼠瘦素 ELISA试剂盒 |
96 tests | – |
LBIS® C-Peptide-Mouse (U type)
LBIS® 小鼠 C-肽 ELISA 试剂盒（U 型）
胰岛素是细胞中的单链胰岛素原合成后，形成二硫键，通过酶分解激活，裂解成Ｃ肽与胰岛素。小鼠、大鼠的胰岛素的氨基酸序列相同，但Ｃ肽部分稍有不同。小鼠Ｃ肽１是 29 个氨基酸，２是 31 个的单链肽。Ｃ肽是从胰岛素原分离后，与胰岛素一同分泌生成的。长期以来，人们一直认为Ｃ肽没有生物活性，仅在合成胰岛素过程中，保证Ａ链和Ｂ链正确折叠以及二硫键正确配对时起作用。近年，随着研究的不断深入，证明了Ｃ肽具有多种生物学作用。首先，10－9M 的Ｃ肽能与内皮细胞、肾小管上皮细胞和成纤维细胞表面的Ｇ蛋白偶联受体结合。激活细胞中钙离子依赖性的信号、激活 Na＋-K＋-ATPase、促进内皮细胞的 NO 合成、与受体的结合有立体结构特异性；与胰岛素、胰岛素原、IGF-I、-II、NPY 之间无交叉反应。而且通过对缺少Ｃ肽的Ⅰ型糖尿病患者注射Ｃ肽类药物，能起到增强骨骼肌以及皮肤的血液循环、降低肾小球超滤的风险、抑制白蛋白从尿液中的排泄、改善神经机能的作用。但对身体健康的人来说，这类药物没有此等功效。因此，建议Ⅰ型糖尿病患者可以在注射胰岛素的同时，投放Ｃ肽，有利于防止并发症的发生。
Ｃ肽的Ｃ末端的五肽（27-31）在与受体的结合中起着重要的作用，缺少这部分的 Des（27-31）Ｃ肽就会失去它的作用。这种五肽可以完全取代Ｃ肽和受体的结合，激活 Na+-K+ATPase。有报告指出新生大鼠中 Des（27-31）Ｃ肽的存在量约占Ｃ肽总量的37%，而在成年大鼠中只占8.5%。
Ｃ肽在血液中的寿命是胰岛素的好几倍。在临床上，可以通过测量Ｃ肽在血液中的浓度来观察胰岛素的合成和分泌功能。且Ｃ肽在尿液中多量排除，一定程度上与血液中Ｃ肽的平均值相关，所以也可以通过尿液来检测。
作为人工胰岛中胰岛素分泌的指标，Ｃ肽测量是有效的。由于在培养液中经常添加胰岛素，如果要测量培养后培养液中的胰岛素的话，就不能很好地区别出分泌的胰岛素和添加的胰岛素，必须减掉培养开始时胰岛素的量。这种情况下，如果分泌的胰岛素量过少，测量误差的影响会增大，从而不能做出正确的判断。这时候，如果测量Ｃ肽，因为Ｃ肽与胰岛素是等摩尔分泌的，所以能够正确判断分泌的胰岛素。
本公司的整套产品能够识别Ｃ肽１、２的交叉部分，可以测量Ｃ肽的总量。
◆特点
● 短时间测定（完全反应时间：５小时）
● （标准用量 10 μL）可测
● 使用对环境无害的防腐剂
● 全部试剂均为液体，可直接使用
● 精密的测定密度和高再现性
◆构成
|
组成 |
状态 |
容量 |
|
(A) 抗体固相化 96 孔板 |
洗净后使用 |
96 wells（8×12）/1 块 |
|
(B) 标准溶液（6,000 pg/mL） |
稀释后使用 |
500 μL/1 瓶 |
|
(C) 缓冲液 |
即用 |
60 mL/1 瓶 |
|
(D) 抗C-肽抗体生物素结合 |
稀释后使用 |
100 μL/1 瓶 |
|
(E) 过氧化物・抗生物素蛋白结合物 |
稀释后使用 |
100 μL/1 瓶 |
|
(F) 显色液（TMB） |
即用 |
12 mL/1 瓶 |
|
(H) 反应停止液（1M H2SO4）※小心轻放 |
即用 |
12 mL/1 瓶 |
|
( I ) 浓缩洗净液（10×） |
稀释后使用 |
100 mL/1 瓶 |
|
封板膜 |
4 张 |
|
|
使用说明书 |
1 份 |
◆样本
小鼠的血清或血浆
10 μL/well（用本品配备的缓冲液稀释后、50 μL 分注在孔板中。）
◆测定范围
46.9~3,000 pg/mL（标准曲线范围）
234.5~15,000 pg/mL（检体量 10 μL 的时候）
◆Validation data
精度测试（检测内变异系数）
|
样本 |
A |
B |
|
1 |
976 |
238 |
|
2 |
969 |
230 |
|
3 |
965 |
230 |
|
4 |
1023 |
235 |
|
5 |
977 |
231 |
|
6 |
1018 |
228 |
|
7 |
1038 |
229 |
|
8 |
995 |
225 |
|
mean |
995 |
231 |
|
SD |
27.7 |
4.10 |
|
CV(%) |
2.78 |
1.78 |
单位：pg/mL
再现性测试（检测内变异系数）
|
测量日/检体 |
C |
D |
E |
|
第0天 |
1502 |
301 |
60.9 |
|
第1天 |
1500 |
302 |
63.8 |
|
第2天 |
1499 |
301 |
62.2 |
|
第3天 |
1501 |
300 |
58.8 |
|
mean |
1500 |
301 |
61.4 |
|
SD |
1.12 |
0.66 |
2.13 |
|
CV(%) |
0.07 |
0.22 |
3.46 |
单位：pg/mL, n=4
添加回收测试
样本F
|
添加量 |
实测值 |
回收量 |
回收率(%) |
|
0.00 |
300 |
– |
– |
|
265 |
551 |
250 |
94 |
|
398 |
683 |
382 |
96 |
|
531 |
827 |
527 |
99 |
单位：pg/mL, n=2
样本G
|
添加量 |
实测值 |
回收量 |
回收率(%) |
|
0.00 |
58.2 |
– |
– |
|
28.9 |
86.7 |
28.5 |
99 |
|
38.6 |
98.2 |
40.0 |
104 |
|
77.4 |
139 |
80.8 |
104 |
单位：pg/mL, n=2
稀释直线性测试
用稀释缓冲液分三次连续稀释２个血清检体的结果，直线回归方程的 R2 是 1.00 。
欲了解更多相关产品信息，请点击文字：LBIS® 疾病相关动物模型ELISA试剂盒系列
相关资料
 |
 |
 |
| 说明书 |
ELISA试剂盒选择指南①② |
ELISA试剂盒选择指③④ |
参考文献
|
1. |
Inhibition of Gastric Inhibitory Polypeptide Receptor Signaling in Adipose Tissue Reduces Insulin Resistance and Hepatic Steatosis in High-Fat Diet-Fed Mice. Joo E, Harada N, Yamane S, Fukushima T, Taura D, Iwasaki K, Sankoda A, Shibue K, Harada T, Suzuki K, Hamasaki A, Inagaki N. Diabetes. 2017 Apr;66(4):868-879. |
|
2. |
Inhibition of Gastric Inhibitory Polypeptide Receptor Signaling in Adipose Tissue Reduces Insulin Resistance and Hepatic Steatosis in High Fat Diet-Fed Mice. Joo E, Harada N, Yamane S, Fukushima T, Taura D, Iwasaki K, Sankoda A, Shibue K, Harada T, Suzuki K, Hamasaki A, Inagaki N. Diabetes. 2017 Jan 17. |
|
3. |
Insulin Release from the Beta Cells in Acatalasemic Mice Is Highly Susceptible to Alloxan-Induced Oxidative Stress. Kazunori Takemoto, Wakana Doi, Ken Kataoka, Kohji Ishihara, Da-Hong Wang, Hitoshi Sugiyama, Noriyoshi Masuoka. Journal of Diabetes Mellitus, 2015, 5, 81-89 |
|
4. |
Effect of Burdock Root and the Fermented Product on Alloxan-Induced Mouse Hyperglycemia Wakana Doi, Yumi Asada, Ayaka Ohno, Yoshiko Okuda, Shota Masuda, Ayano Matsumoto, Chihiro Mori, Takaya Agarie, Kohji Ishihara, Takayuki Murakami & Noriyoshi Masuoka Journal of Food Research; Vol. 4, No. 4; 201 |
|
5. |
Tissue Complex of Adult Pancreatic Duct and Vascular Endothelial Cells Promotes In Vitro Differentiation into Insulin-Producing Cells. Jun Kanamune, Chongmun Kim, Yasuhiro Iwanaga, Jorge David Rivas-Carrillo, Shoichiro Sumi, Shinji Uemoto and Kazuyuki Yokokawa. J Stem Cell Res Dev 2015, 2: 005 |
|
6. |
Anti-diabetic effect of purple corn extract on C57BL/KsJ db/db mice. Bo Huang, Zhiqiang Wang, Jong Hyuk Park, Ok Hyun Ryu, Moon Ki Choi, Jae-Yong Lee, Young-Hee Kang, and Soon Sung Lim. Nutr Res Pract. 2015 Feb;9(1):22-29. |
|
7. |
Xanthohumol Improves Diet-induced Obesity and Fatty Liver by Suppressing Sterol Regulatory Element-binding Protein (SREBP) Activation. Miyata S, Inoue J, Shimizu M, Sato R. J Biol Chem. 2015 Aug 14;290(33):20565-79. |
|
8. |
Effect of Aspergillus awamori-Fermented Burdock Root on Mouse Diabetes Induced by Alloxan—Prevention of Cell Apoptosis. Kazunori Takemoto, Wakana Doi, Ayumi Zukeran, Junji Inoue, Kohji Ishihara, Noriyoshi Masuoka. Food and Nutrition Sciences, Vol.5 No.16(2014), Article ID:49228,7 pages |
|
9. |
Engineering of pseudoislets: effect on insulin secretion activity by cell number, cell population, and microchannel networks. Kojima N, Takeuchi S, Sakai Y. Transplant Proc. Vol.46(4), p1161-65, May 2014. |
|
10. |
Evaluation of 7-O-galloyl-d-sedoheptulose, isolated from Corni Fructus, in the adipose tissue of type 2 diabetic db/db mice. Park CH., Tanaka T., Yokozawa T. Fitoterapia, Vol.89, p131-142, Sep 2013. |
|
11. |
Periaortic adipose tissue-specific activation of the renin-angiotensin system contributes to atherosclerosis development in uninephrectomized apoE-/- mice. Kawahito H., Yamada H., Irie D., Kato T., Akakabe Y., Kishida S., Takata H., Wakana N., Ogata T., Ikeda K., Ueyama T., Matoba S., Mori Y., Matsubara H. American Journal of Physiology – Heart and Circulatory Physiology, Vol.305, p667-675, Sep 2013. |
|
12. |
Effect of vitamin E on alloxan-induced mouse diabetes. Kamimura W., Doi W., Takemoto K., Ishihara K., Wang D-H., Sugiyama H., Oda S., Masuoka N. Clinical Biochemistry, Vol.46(9), p795-798, Jun 2013. |
|
13. |
Evaluation of 7-O-galloyl-d-sedoheptulose, isolated from Corni Fructus, in the adipose tissue of type 2 diabetic db/db mice. C.H.Park, T.Tanaka, T.Yokozawa. Fitoterapia, Vol.89, p131-42, Sep 2013. |
|
14. |
Therapeutic approach for type 1 diabetes mellitus using the novel immunomodulator FTY720 (fingolimod) in combination with once-daily injection of insulin glargine in non-obese diabetic mice. T.Tsuji, M.Inoue, Y.Yoshida, T.Fujita, Y.Kaino, T.Kohno. Journal of Diabetes Investigation, Vol.3(2), p132-137, Apr 2012. |
|
15. |
Effect of vitamin E on alloxan-induced mouse diabetes. Kamimura W, Doi W, Takemoto K, Ishihara K, Wang D-H, Sugiyama H, Oda S, Masuoka N. Clinical Biochemistry, Mar 2013. |
|
16. |
Intramedullary Cavity as an Implant Site for Bioartificial Pancreas: An In Vivo Study on Diabetic Canine. Y, Kai-Chiang., W, Chang-Chin., S, Shoichiro., K, Tzong-Fu., L, Sheng-Chuan., L, Feng-Huei. Transplantation, Vol. 90(6), p604-611, Sep 2010. |
|
17. |
The in vivo performance of bioartificial pancreas in bone marrow cavity: A case report of a spontaneous diabetic feline. K, C, Yang., C, C, Wu., S, C, Lin., S, Sumi., F, H, Lin. Biochemical and Biophysical Research Communications, Vol.393(3), p362-364, Mar 2010. |
|
18. |
In vitro reprogramming of adult hepatocytes into insulin-producing cells without viral vectors . H, Motoyama., S, Ogawa., A, Kubo., S, Miwa., J, Nakayama., Y, Tagawa., S, Miyagawa. Biochemical and Biophysical Research Communications, Vol.385(1), p123-128, Jul 2009. |
|
19. |
Efficient differentiation of insulin-producing cells from skin-derived stem cells. Guo,W.,Miao,C.,Liu,S.,Qiu,Z.,Li,J., and Duan, E. Cell Proliferation, Vol.42(1), p49-62, 2009. |
|
20. |
Enrichment of Putative Pancreatic Progenitor Cells From Mice by Sorting for Prominin1(CD133)and PDGFRb. Yuichi Hori,Miki Fukomoto,Yoshikazu Kuroda. Stem Cells;0:2008-0192v1,2008 |
|
21. |
Possibility of insulin-producing cells derived from mouse embryonic stem cells for diabetes treatment. T, Ibii., H, Shimada., S, Miura., E, Fukuma., H, Sato., H, Iwata. Journal of Bioscience and Bioengineering,Vol.103(2), p140-146, Feb 2007. |
|
22. |
The dual function of hepatic SOCS3 in insulin resistance in vivo. Torisu, T., Sato, N., Yoshiga, D., Kobayashi, T., Yoshioka, T., Mori, H., Iida, M. and Yoshimura, A. Genes to Cells, 12, p143-154, 2007. |
|
23. |
Prolonged remission of diabetes by regeneration of bold italic beta cells in diabetic mice treated with recombinant adenoviral vector expressing glucagon-like peptide-1. Liu, M.J., Shin, S., Li, N., Shigehara, T., Lee, Y.S., Yoon, J.W., and Jun H.S. Molecular Therapy 15: p86-93, 2007. |
|
24. |
Possibility of insulin-producing cells derived from mouse embryonic stem cells for diabetes treatment. Ibii, T., Shimada, H, Miura, S., Fukuma, E.,Sato, H.,and Iwata,H. J Bioscience Bioengineering 103: p140-146, 2007. |
|
25. |
A human b-cell line for transplantation therapy to control type 1 diabetes. Narushima, M., Kobayashi, N., Okitsu, T., Tanaka, Y., Li, S.A., Chen, Y., Miki, A., Tanaka, K., Nakaji, S., Takei, K., Gutierrez, A.S., Rivas-Carrillo, J.D., Navarro-Alvarez, N., Jun, H.S., Westerman, K.A., Noguchi, H., Lakey, J.R.T.,, Leboulch, P., Tanaka, N., and Yoon, J.W. Nature Biotechnology, Vol. 23(10), p1274-1282, 2005. |
| 产品编号 | 产品名称 | 产品规格 | 产品等级 |
| 635-07239 | （AKRCP-031）LBIS® Mouse C-peptide ELISA kit (U-type) LBIS®小鼠 C-肽 ELISA试剂盒（U型） |
96 tests | – |
|
品牌：Cosmo Bio
CAS No.： 储存条件：室温 纯度：– |
| 产品编号
(生产商编号) |
等级 | 规格 | 运输包装 | 零售价(RMB) | 库存情况 | 参考值 |
|
KYD-006-EX |
– | 1 Set | – | 咨询 | – | – |
* 干冰运输、大包装及大批量的产品需酌情添加运输费用
* 零售价、促销产品折扣、运输费用、库存情况、产品及包装规格可能因各种原因有所变动，恕不另行通知，确切详情请联系上海金畔生物科技有限公司。
产品描述相关资料下载相关产品浏览记录 特别设计用于在低温状态运输小鼠胚胎的试剂盒。免于运输小鼠的成本，避免小鼠在运输途中的意外事件。也能避免病原菌的感染。
3层结构，保证内容物处于恒定的温度。
抗小鼠Trβ2，兔
Anti Mouse Trβ2, Rabbit
|
锥体细胞标记抗体 |
||||||||
|
产品编号 |
产品名称【中文名称】 |
规格 |
包装 |
|||||
|
016-24261 |
Anti Mouse Trβ2, Rabbit 【抗小鼠Trβ2，兔】 |
免疫化学用 |
50 μg |
|||||
|
抗体信息 |
||||||||
|
抗原名 |
Trβ2 |
适用实验 |
WB、免疫染色 |
同种型 |
IgG |
免疫染色图像（小鼠视网膜） 绿：Trβ2
数据提供： Osaka Bioscience Institute 第4 研究部 古川贵久 |
||
|
抗原信息 |
小鼠Trβ2N末端序列（1-107氨基酸序列肽） |
物种交叉反应性 |
小鼠 |
标签 |
非标签 |
|||
|
抗原别名 |
THRB, ERBA2, PRTH, NR1A2, GRTH |
免疫动物 |
兔 |
克隆号 |
– （多克隆抗体） |
|||
|
详细信息 |
Trβ2（甲状腺激素受体β2）是对甲状腺素具有高亲和性的受体。Trb2是属于核激素受体家族和NR1亚家族。因为Trb2在胚胎视网膜绿色杆细胞的表达，可作为锥体细胞标记物使用。 本产品是针对Trβ2相关抗体。 |
|||||||
|
使用文献 |
1. Sanuki, R, et al., Nature Neuroscience, 14, 1125（2011）. |
|||||||
| 产品编号 | 产品名称 | 产品规格 | 产品等级 |
| 016-24261 | Anti Mouse Trβ2, Rabbit 抗小鼠Trβ2，兔 |
50 μg | 免疫化学用 |
抗小鼠皮卡丘素，兔
Anti MousePikachurin, Rabbit
|
功能区突触间隙基质标记抗体 |
||||||||
|
产品编号 |
产品名称【中文名称】 |
规格 |
包装 |
|||||
|
011-22631 |
Anti MousePikachurin, Rabbit 【抗小鼠皮卡丘素，兔】 |
免疫化学用 |
50 μL |
|||||
|
抗体信息 |
||||||||
|
抗原名 |
Pikachurin |
适用实验 |
WB、免疫染色 |
同种型 |
IgG |
免疫染色图像： （红色：皮卡丘素）
数据提供： Osaka Bioscience Institute第4 研究部 古川贵久 |
||
|
抗原信息 |
GST融合小鼠皮卡丘素N-末端序列肽（28-354个氨基酸） |
物种交叉反应性 |
小鼠，大鼠 |
标签 |
非标签 |
|||
|
抗原别名 |
EGFLAM, AGRINL, AGRNL |
免疫动物 |
兔 |
克隆号 |
– （多克隆抗体） |
|||
|
详细信息 |
皮卡丘素是视觉神经传递细胞外基质蛋白。存在于带状突触间隙。与生物体的动态视觉相关，与称之为 Dystroglycan 肌营养不良蛋白聚糖糖蛋白结合。另外，在感光细胞和双极细胞的树突相互作用下担任重要功能。 本产品是识别皮卡丘素抗体。 |
|||||||
|
使用文献 |
1. Omori. Y. et al., J Neurosci., 32, 6126（2012）. |
|||||||
| 产品编号 | 产品名称 | 产品规格 | 产品等级 |
| 011-22631 | Anti MousePikachurin, Rabbit 抗小鼠皮卡丘素，兔 |
50 μL | 免疫化学用 |
抗ASK1，单克隆抗体
Anti ASK1, Monoclonal Antibody
|
细胞应激相关因子ASK1抗体 |
||||||||
|
产品编号 |
产品名称【中文名称】 |
规格 |
包装 |
|||||
|
010-22341 |
Anti ASK1, Monoclonal Antibody 【抗ASK1，单克隆抗体】 |
免疫化学用 |
50 μg |
|||||
|
抗体信息 |
||||||||
|
抗原名 |
ASK1 |
适用实验 |
WB |
同种型 |
IgG |
WB图像 （野生型小鼠ASK1（+/+）和ASK1基因敲除小鼠（-/-）的骨髓来源的巨噬细胞提取液）
数据提供： 东京大学大学院药学研究科 丸山顺一 野口拓也 |
||
|
抗原信息 |
小鼠ASK1的948-1380氨基酸序列肽 |
物种交叉交叉反应性 |
人，小鼠 |
标签 |
非标签 |
|||
|
抗原别名 |
Apoptosis Signal Regulating Kinase1, MAP3K5, MEKK5, MAPKKK5 |
免疫动物 |
小鼠 |
克隆号 |
TC003 |
|||
|
详细信息 |
ASK1是位于MAP激酶通路最上游的细胞内蛋白质磷酸酶。通过应激刺激使活性酶细胞被激活，诱导凋亡和细胞分化。另一方面有报道称，ASK1激活可诱导阿尔茨海默症和ALS神经细胞凋亡。 本产品是识别ASK1的单克隆抗体。 |
|||||||
|
使用文献 |
1. Ichijo, H., Nishida, E., Irie, K., et al.: SCIENCE, 275, 90 (1997). |
|||||||
| 产品编号 | 产品名称 | 产品规格 | 产品等级 |
| 010-22341 | Anti ASK1, Monoclonal Antibody 抗ASK1，单克隆抗体 |
50 μg | 免疫化学用 |
抗小鼠Sema4D/CD100，单克隆抗体
Anti Mouse Sema4D/CD100, Monoclonal Antibody
|
信号蛋白家族Sema4D抗体 |
||||||||
|
产品编号 |
产品名称【中文名称】 |
规格 |
包装 |
|||||
|
016-22821 |
Anti Mouse Sema4D/CD100, Monoclonal Antibody 【抗小鼠Sema4D/CD100，单克隆抗体】 |
免疫化学用 |
100 μL |
|||||
|
抗体信息 |
||||||||
|
抗原名 |
Sema4D/CD100 |
适用实验 |
免疫细胞染色、IP |
同种型 |
IgG |
IP图像 （Sema4A过度表达Cos-7细胞）
数据提供： 传染病领域 熊之乡淳 |
||
|
抗原信息 |
小鼠Sema4D-Fc融合蛋白重组 |
物种交叉反应性 |
人，小鼠 |
标签 |
非标签 |
|||
|
抗原别名 |
Semaphorin-4D, SEMAJ, M-Sema G, GR3 |
免疫动物 |
小鼠 |
克隆号 |
5H7 |
|||
|
详细信息 |
信号蛋白家族是发育过程中决定神经轴突方向的神经导向因子的分子群。有报道称Sema4D与神经系统中GABA操作性突触的形成有关。 本产品是识别Sema4D的抗体。 |
|||||||
|
使用文献 |
1. Okuno, T. et al.:J.Immunol.,184, 1499 (2010). |
|||||||
| 产品编号 | 产品名称 | 产品规格 | 产品等级 |
| 016-22821 | Anti Mouse Sema4D/CD100, Monoclonal Antibody 抗小鼠Sema4D / CD100，单克隆抗体 |
100 μL | 免疫化学用 |
抗小鼠Sema4A，单克隆抗体
Anti Mouse Sema4A, Monoclonal Antibody
|
信号蛋白家族Sema4A抗体 |
||||||||
|
产品编号 |
产品名称【中文名称】 |
规格 |
包装 |
|||||
|
019-22811 |
Anti Mouse Sema4A, Monoclonal Antibody 【抗小鼠Sema4A，单克隆抗体】 |
免疫化学用 |
100 μL |
|||||
|
抗体信息 |
||||||||
|
抗原名 |
Sema4A |
适用实验 |
免疫染色、IP |
同种型 |
IgG |
IP图像 （Sema4A过度表达Cos-7细胞）
数据提供： |
||
|
抗原信息 |
小鼠Sema4A-Fc的融合蛋白重组 |
物种交叉反应性 |
人，小鼠 |
标签 |
非标签 |
|||
|
抗原别名 |
Semaphorin-4A SEMAB, Sema B, CORD10, RP35 |
免疫动物 |
小鼠 |
克隆号 |
1H9 |
|||
|
详细信息 |
信号蛋白家族是发育过程中决定神经轴突方向的神经导向因子的分子群。据报道称Sema4A在多发性硬化症患者的血液中浓度升高，被认为与其病发症相关。 本产品是识别Sema4A的抗体。 |
|||||||
|
使用文献 |
1. Kumanogoh, A. et al.: Immunity, 22, 305 (2005). |
|||||||
| 产品编号 | 产品名称 | 产品规格 | 产品等级 |
| 019-22811 | Anti Mouse Sema4A, Monoclonal Antibody 抗小鼠Sema4A，单克隆抗体 |
100 μL | 免疫化学用 |
小鼠细胞因子用ELISA试剂盒
LBIS® 系列小鼠用产品追加3个新产品！
LBIS® 细胞因子ELISA试剂盒系列追加了3个新产品。
此前版本的产品由于灵敏度不够而检测不了的正常样品和低浓度样品，新产品解决了这一问题，可以实现高灵敏度和高再现性检测。
另外，与以往的系列相同，试剂盒中不使用任何管制物质的原材料。因此，购买时可以省去申请的步骤。
◆特点
● 不适用于卡塔赫纳生物安全议定书（不含杆状病毒）
● 检测时间短
● 高精度和高再现性
● 可以检测微量的样品
● 所有的试剂均为溶液，即开即用。
● 有效期为生产后一年
◆试剂盒内容
● 已包被96孔板抗体
● 标准品（冻干品）
● 缓冲液
● 生物素结合抗体（冻干品）
● 过氧化物酶和抗生物素蛋白缀合物
● 显色液（TMB）
● 反应终止液（1 M H2SO4）
● 浓缩洗涤液（10×）
不适用于卡塔赫纳生物安全议定书
◆LBIS® Mouse IFN-γ ELISA Kit
可以短时间高灵敏的检测微量样品中小鼠血清/血浆中的IFN-γ
性能
校准曲线范围：2.05~500 pg/mL
检测时间：总反应时间为3小时50分
样品量：50 μL/well （稀释样品）
检测波长
主波长450 nm / 副波长620 nm
样品
小鼠血清/血浆（肝素/ EDTA）
IFN-γ 样品检测（例）
用本产品和其他公司产品检测小鼠正常血清样品
|
样品 |
检测值（pg/mL） |
|
|
本产品 |
其他公司产品 |
|
|
血清-1 |
30.1 |
N.D. |
|
血清-2 |
31.3 |
N.D. |
|
血清-3 |
5.73 |
N.D. |
|
血清-4 |
56 |
N.D. |
|
血清-5 |
19.3 |
N.D. |
标准曲线
|
产品编号 |
生产商编号 |
产品名称 |
包装 |
|
630-44701 |
AKMIFNG-011 |
LBIS® Mouse IFN-γ ELISA Kit |
96 孔 |
◆LBIS® Mouse TNF-α ELISA Kit
可以短时间高灵敏的检测微量样品中小鼠血清/血浆中的IFN-γ
性能
校准曲线范围：3.58～700 pg/mL
检测时间：总反应时间为3小时50分钟
样品量：50 μL/well （稀释样品）
检测波长
主波长450 nm / 副波长620 nm
样品
小鼠血清/血浆（肝素/ EDTA）
TNF-α样品检测（例）
用本产品和其他公司产品检测小鼠正常血清样品
|
样品 |
检测值（pg/mL） |
|
|
本产品 |
其他公司产品 |
|
|
血清-1 |
5.1 |
N.D. |
|
血清-2 |
3.72 |
N.D. |
|
血清-3 |
4.49 |
N.D. |
|
血清-4 |
3.84 |
N.D. |
|
血清-5 |
4.2 |
N.D. |
标准曲线
|
产品编号 |
生产商编号 |
产品名称 |
包装 |
|
634-44721 |
AKMTNFA-011 |
LBIS® Mouse TNF-α ELISA Kit |
96 孔 |
◆LBIS® Mouse IL-17A ELISA Kit
可以短时间高灵敏的检测微量样品中小鼠血清/血浆中的IFN-γ
性能
校准曲线范围：2.06～800 pg/mL
检测时间：总反应时间为3小时50分
样品量：50 μL/well （稀释样品）
检测波长
主波长450 nm / 副波长620 nm
样品
小鼠血清/血浆（肝素/ EDTA）
IL-17A 样品检测（例）
用本产品和其他公司产品检测小鼠正常血清样品
|
样品 |
检测值（pg/mL） |
|
|
本产品 |
其他公司产品 |
|
|
血清-1 |
5.75 |
N.D. |
|
血清-2 |
46.6 |
N.D. |
|
血清-3 |
45.2 |
5.14 |
|
血清-4 |
1.90（参考值） |
N.D. |
|
血清-5 |
53.2 |
N.D. |
标准曲线
|
产品编号 |
生产商编号 |
产品名称 |
包装 |
|
637-44711 |
AKMIL17-011 |
LBIS® Mouse IL-17A ELISA Kit |
96 孔 |
◆相关产品
|
产品编号 |
生产商编号 |
产品名称 |
包装 |
|
638-40841 |
AKMIL12-011 |
LBIS® Mouse IL-12 ELISA Kit |
96 孔 |
|
631-40831 |
AKH-VEGF |
LBIS® Human VEGF ELISA Kit |
96 孔 |
|
635-42311 |
AKH-IL6 |
LBIS® Human IL-6 ELISA Kit |
96 孔 |
|
632-42321 |
AKH-IL8 |
LBIS® Human IL-8(CXCL8) ELISA Kit |
96 孔 |
|
639-42331 |
AKH-TNFA |
LBIS® Human TNF-α ELISA Kit |
96 孔 |
※ 本页面产品仅供研究用，研究以外不可使用。
| 产品编号 | 产品名称 | 产品规格 | 产品等级 |
Tim-4 (mouse):Fc (human) (rec.) (Biotin)
Tim-4（小鼠）：Fc（人）（重组）（生物素标记）
◆产品详情
别名：TIM4，TIMD4
T Cell Immunoglobulin and Mucin Domain-containing Protein 4；
T细胞免疫球蛋白和粘蛋白结构域蛋白4
产品类型：蛋白质
特性
来源/宿主： CHO 细胞
序列：小鼠 TIM-4（aa 22-279）的胞外域融合到人 IgG1 的 Fc 区的Ｎ端
交叉反应性：人，小鼠
应用
功能：
-抑制受刺激的Ｔ细胞增殖
-用于分离细胞外囊泡
标记：生物素标记
特异性：TIM-4 可以用于分离表面含有磷脂酰丝氨酸（PS）的不同物种（人，小鼠，大鼠等）的细胞外囊泡。
生物活性：测量其对经抗 CD3 诱导刺激人Ｔ细胞增殖能力的抑制作用。Tim-4 (mouse) : Fc (human) (rec.) （Biotin）结合磁珠可用于细胞外囊
泡的分离。在钙离子依存的情况下，120 ng 蛋白足够分离 1010 的细胞外囊泡颗粒。
分子量：~95kDa（SDS-PAGE）
纯度：≥95%（SDS-PAGE）
内毒素：<0.05 EU/μg 蛋白（LAL test；Lonza）
浓度：复溶后 0.1mg/mL
复溶：100 µL 灭菌水复溶
规格：溶于 PBS 中，经 0.2 μm 过滤后冻干
其他产品数据：NCBI reference NP_848874.3: Tim-4 (mouse)
运输和保存
运输：冰块
短期储存：+4℃
长期储存：-20°C
保存建议：避免反复冻融。
使用/稳定性：收到产品后可在 -20°C 稳定保存 6-12 个月。产品分装后可在 -20°C 稳定保存 3 个月。
◆产品描述
细胞外囊泡（EVs）由多种细胞释放到细胞微环境中，可以自发的运输或携带多种生物活性分子，如非编码 RNA、miRNA、基因组 DNA、脂质、生长因子和信号分子。EVs 可分为外泌体（30～100nm）、微囊泡（100-1000 nm）和凋亡小体（＞1000 nm）。EVs 不仅在正常生理过程的调节中起着重要作用，而且在疾病发病机制中起着重要作用，它的内含物能够反映分泌细胞的生理状态。目前正在研究和开发利用 EVs 进行治疗和诊断的方法。因此，开发理想的 EVs 分离和定量方法已经成为了一个活跃的研究领域。细胞外囊泡在其外部脂质双分子层上表达磷脂酰丝氨酸（PS）。
Tim-4（T cell immunoglobulin and mucin domain-containing protein 4）是一种单链I型膜蛋白，属于免疫球蛋白超家族和 TIM 家族。Tim-4 含有一个 Ig 样 V 型（免疫球蛋白样）结构域。它在树突细胞和巨噬细胞上表达。Tim-4 在Ｔ辅助细胞 2（Th2）的增殖中起重要作用。Tim-4 以钙离子依赖的形式与凋亡细胞表面的磷脂酰丝氨酸（PS）结合，并且介导凋亡细胞的吞噬。
EV 膜富含磷脂酰丝氨酸（PS），Tim-4 可以结合 EVs 表面上的 PS。华山力成教授团队开发了一种新型的亲和方法，通过将生物素亲和的 Tim-4 结合到链霉素磁珠上，在钙离子存在的情况下，进行 EVs 的分离。该方法可以用于替代目前常用的超速离心法来进行 EVs 的纯化。这种全新的 Tim-4 亲和法与其他方法相比（如超离法、PEG 沉淀法、抗体免疫沉淀法），可以获得更好的产率、纯度，以及分离多种群 EVs。
参考文献
|
[1] |
A novel affinity-based method for the isolation of highly purified extracellular vesicles:W. Nakai, et al.; Sci. Rep. 6, 33935 (2016) |
|
[2] |
High purity isolation and sensitive quantification of extracellular vesicles using affinity to Tim-4: T. Yoshida, et al.; Curr. Prot. Cell Biol. 77, 3.45.1-3.45.18 (2017) |
| 产品编号 | 产品名称 | 产品规格 | 产品等级 |
| AG-40B-0180B-C010 | Tim-4 (mouse):Fc (human) (rec.) (Biotin) Tim-4 (小鼠):Fc (人) (重组) (生物素标记) |
10 µg | – |
| AG-40B-0180B-3010 | Tim-4 (mouse):Fc (human) (rec.) (Biotin) Tim-4 (小鼠):Fc (人) (重组) (生物素标记) |
3 x 10 µg | – |
重组型Fc（人）：Dectin-1（小鼠）
Fc (human):Dectin-1 (mouse) (rec.)
◆产品列表
|
产品编号 |
产品名称 |
包装 |
|
AG-40B-0138-C050 |
重组型Fc（人）：Dectin-1（小鼠） |
50 ug |
◆产品规格
|
产品详情 |
|
|
别名 |
C型凝集素结构域家族7成员A; β-葡聚糖受体; 树突状细胞相关C型凝集素1; C型凝集素超家族 成员12; DC相关C型凝集素1 |
|
产品类别 |
蛋白 |
|
特性 |
|
|
来源/宿主 |
HEK 293 cells |
|
序列 |
在人IgG1的Fc部分的C-末端融合了小鼠dectin-1（第72-244位氨基酸）。 |
|
交叉反应 |
小鼠 |
|
分子量（MW） |
~56kDa (SDS-PAGE) |
|
纯度 |
≥95% (SDS-PAGE) |
|
内毒素含量 |
<0.01EU/μg纯化蛋白 (LAL测试; Lonza)。 |
|
浓度 |
重溶后为1mg/mL。 |
|
配制 |
用50μL灭菌水复溶。 |
|
简述 |
冻干品。含有PBS。 |
|
其他产品数据 |
UniProt link Q6QLQ4: Dectin-1 (mouse) http://www.uniprot.org/uniprot/Q6QLQ4） |
|
运输及储存 |
|
|
运输 |
冰袋 |
|
短期存储 |
+4°C |
|
长期存储 |
-20°C |
|
储存建议 |
重新配制后，建议分装并储存于-20°C。 |
|
避免反复冻融。 |
|
|
使用含有至少0.1％BSA的PBS进行产品稀释。 |
|
|
使用/稳定性 |
收到产品后可在-20℃稳定保存至少6个月。 |
|
分装后的产品可在-20℃稳定保存最多3个月。 |
|
◆产品描述
Dectin-1和dectin-2是C型凝集素家族的II型跨膜蛋白。 它们在其细胞外的区域都有单个糖基识别结构域（CRD）。 Dectin-1和Dectin-2在巨噬细胞和树突状细胞中表达。Dectin-1通过其胞浆中的免疫受体酪氨酸抑制基序（ITAM）样基序及其CRD来识别β-葡聚糖与信号，而dectin-2则识别α-甘露聚糖并通过与含有ITAM的Fc受体γ-链结合来转导其信号。Dectin-1通过检测β-葡聚糖并通过增加Th17介导的免疫应答来控制真菌感染。 Dectin-1似乎也能检测到非真菌配体，如无脊椎动物原肌球蛋白。Dectin-1通过结合非真菌配体，来调控IL-33驱动的天然淋巴细胞产生的IL-13，从而控制肺中由尘螨空气过敏原引起的2型免疫应答。
◆参考文献
|
[1] Quantitative Analysis of Candida Cell Wall Components by Flow Cytometry with Triple-Fluorescence Staining: M.F. Nogueira, et al.; J. Microbiol. Modern Techn. 2, 2017 |
◆相关产品
|
产品编号 |
产品名称 |
包装 |
|
AG-40B-0139-C050 |
重组型Fc（人）：Dectin-2（小鼠） |
50 ug |
※ 本页面产品仅供研究用，研究以外不可使用。
| 产品编号 | 产品名称 | 产品规格 | 产品等级 |
